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PCR技术极其应用; 多聚酶链式反应
(PCR:Polymerase Chain Reaction);;PCR技术的创建;Kary B. Mullis(1944-);三篇重要论文;;;;;;;;;;Taq DNA聚合酶(thermus aquaticus);72℃;PCR技术的原理; ;;PCR扩增原理;2 PCR技术的特点;2 )特异性;引物设计:
(1)序列应位于高度保守区,与非扩增区无同源序列。
(2)引物长度以15-40 bp为宜。
(3)碱基尽可能随机分布,G+C占50-60%。
(4)引物内部避免形成二级结构。
(5)两引物间避免有互补序列。
(6)引物3’端为关键碱基;5’端无严格限制。;;3)操作简便易行;;4 )用途广泛;PCR的反应体系和方法; 总体积 50-100 ?l
Buffer 缓冲液
dNTP 原料
Primer 引物
DNA分子 模板
Taq酶 DNA聚合酶
;PCR技术的基本过程(1);PCR技术的基本过程(2);;1)PCR反应成分;(2)引物浓度
0.1-0.5 ?mol/L
浓度过高易导致模板与引物错配,反应特异性下降。
(3)Taq DNA聚合酶(thermus aquaticus)
0.5-2.5 U/50 ?l
酶量增加使反应特异性下降;酶量过少影响反应产量。;(4)dNTP
dNTP浓度取决于扩增片段的长度
四种dNTP浓度应相等
浓度过高易产生错误碱基的掺入,浓度过低则降低反应产量
dNTP可与Mg2+结合,使游离的Mg2+浓度下降,影响DNA聚合酶的活性。;(5) Mg2+;2)循环参数
变性
使双链DNA解链为单链
94oC 20-30秒
(2) 退火
温度由引物长度和GC含量决定。
增加温度能减少引物与模板的非特异性结合;降低温度可增加反应的灵敏性。
;(3)延伸
70-75℃,一般为72℃
延伸时间由扩增片段长度决定
(4)循环次数
主要取决于模版DNA的浓度
一般为25-35次
次数过多:扩增效率降低
错误掺入率增加;经典循环参数(500bp以内);1)不对称PCR
目的:扩增产生特异长度的单链DNA。
方法:采用两种不同浓度的引物。分别称为限制性引物和非限制性引物,其最佳比例一般是0.01∶0.5μM,关键是限制性引物的绝对量。
用途:制备核酸序列测定的模板
制备杂交探针
基因组DNA结构功??的研究; ;2)反向PCR (reverse PCR) ;;3)多重PCR(复合PCR);;DMD:人类肌营养不良基因;;4)LP-PCR(Labelled primers);;5)锚定PCR(anchored PCR, A-PCR);;;6)PCR固相分析法;7)原位PCR; 原位PCR的作用
既往鉴定细胞内特异序列一般采用原位杂交(ISH),但在每个细胞中目的片段的拷贝数少于10的情况下,该方法的敏感度就明显下降。而标准的PCR则可扩增出细胞内单拷贝的序列,敏感度很高,但却未能与细胞形态学研究相结合。
ISPCR则可把这两者结合起来,成为细胞学诊断中一种崭新的检测技术。利用该法可检测细胞内病毒感染、细胞内基因重排、以及分析细胞内RNA表达产物等方面发挥一定作用。在检测细胞的潜在感染方面也具有重要意义。;操作步骤
1. 细胞或组织固定:细胞经固定和乙醇通透化处理后便适于一般PCR试剂(包括引物和Taq酶)进入
2. PCR扩增细胞内目的片段
3. 原位杂交检测扩增产物;8)RT-PCR;;9) 荧光定量 PCR(real-time PCR)
通过荧光染料或荧光标记的特异性的探针,对PCR产物进行标 记跟踪,实时在线监控反应过程,结合相应的软件可以对结果进行分析,计算待测样品的初始模板量。
荧光定量 PCR仪
光定量PCR仪是一种带有激发光源和荧光信号检测系统的PCR仪,通常配有电脑系统及相应的分析软件。;荧光标记;荧光定量PCR标记方法
内掺式染料
SYBR Green I
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