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蓝耳病:病猪卧地不起。 蓝耳病:病猪耳部皮肤严重发绀,呈“蓝耳”症状。 蓝耳病:病猪耳部皮肤严重发绀,呈“蓝耳”症状。 5. 病理变化 间质性肺炎,肺呈“胸腺样”和肝样。淋巴结的轻度或中度肿大。 流产胎儿出现动脉炎﹑心肌炎和脑炎,以血管周围出现巨噬细胞和淋巴细胞浸润为特征。 蓝耳病:间质性肺炎。 蓝耳病:间质性肺炎。 蓝耳病:肺炎病变,显示出血性炎症。 蓝耳病:淋巴结肿大、水肿。 蓝耳病:淋巴结肿大、水肿。 2006年我国大部分省市暴发流行高致病性蓝耳病。 高致病性PRRS的临床特点 大小猪只均发病,表现高热(41~42℃),昏睡,呼吸困难,育肥猪以及一些感染怀孕母猪也发病死亡。 仔猪发病率达100%,死亡率50%以上,母猪流产率30%以上。 脑部海马区大量血管的管壁细胞肿大增生,胃部有出血和溃疡。 6. 诊断方法 临床诊断:初步诊断(可能) 实验室诊断:确诊 病原检测 病毒分离…………………….….…… 很少应用 病毒蛋白检测…………………..…… 很少应用 病毒核酸检测…………………..…… 最常用 抗体检测 血清中和试验 (SN)……………….… 较少应用 间接荧光抗体试验 (IFA)………...… 很少应用 酶联免疫吸附试验 (ELISA)…….…. 最常用 免疫过氧化物酶单层试验 (IPMA)…. 很少应用 病毒分离: 准确,但病料的采集极为重要,因周期长极少用于诊断。采集病料: 死胎或活产仔猪:肺、心、脑、肾、肝和脾等。 怀孕后期流产胎儿:胎儿血清,肺等。 哺乳仔猪、断奶仔猪和育肥猪:最好采集肺,也可用脾、脑、扁桃体等,母猪可用血清、血浆。 注意:木乃伊胎儿、公猪精液不能用于病毒分离。 6.1 病原学检测 病毒抗原(蛋白)检测: 免疫组织化学技术。 免疫荧光抗体染色技术。 双抗夹心ELISA。 病毒核酸(RNA)检测: 反转录-聚合酶链反应(RT-PCR):在诊断中得到广泛应用,但费用较贵。 核酸探针杂交技术:因繁琐,很少应用。 6.2 血清学检测 免疫过氧化物酶单层试验(IPMA) 欧洲国家,细胞培养,结果判定有一定的主观性,不能自动显示,费时,应用不广泛。 间接荧光抗体试验(IFA) 北美,与IPMA具有相同的特异性和敏感性,血清抗体效价≥1:20判为阳性。检测结果不能自动显示,不适合大规模检疫,结果判定有一定的主观性,应用不广泛。 血清中和试验(SN) 特异性好,4~6周才出现中和抗体,显然SN不适宜于PRRS的早期诊断。但Yoon等(1994)对常规SN进行改良,在试验中加入20%豚鼠血清以增加补体的含量,提高SN的敏感性(9~11d),可检测到SN抗体。 酶联免疫吸附试验(ELISA) 首次用于PRRSV抗体检测: Albina等(1992),PAM,PRRSV抗原。 改进ELISA: (1)Takikawa等(1996),MARC-145细胞,PRRSV抗原(全病毒)。 (2)美国IDEXX公司, PRRSV全病毒。 (3)基因工程表达的PRRSV单一蛋白,国内外均用重组N蛋白建立ELISA。 7. 防制 平时预防: 引进种猪应隔离饲养30天,进行两次血清学检查,阴性者方可混群。 一旦证明感染则所有引进猪均应处理掉。 同时执行一般卫生防疫措施,防止病原传入。 发病猪场: 哺乳仔猪提前断奶。 母仔隔离饲养。 育成猪全进全出。 免疫预防。 灭活苗:灭活苗免疫猪后,可以刺激猪产生针对ORF5、ORF6、ORF7所编码的蛋白的抗体,而且减少病毒血症的发生,可有效地阻止肺部病变。因此,PRRSV灭活苗能为猪提供安全、有效的保护。 弱毒苗:对PRRS流行区的保育舍猪和哺乳仔 猪有明显的保护作用。 7.1 猪繁殖与呼吸综合征的防制难点 PRRSV变异速度快: 欧洲型和美洲型毒株核苷酸序列同源性仅60%左右,同型不同毒株的同源性也不高。 PRRSV基因序列的进化率(10-2/位/年)明显高于其它RNA病毒(10-3~-5 /位/年)。 PRRSV的变异分布于整个基因组,但以Nsp2基因和ORF5基因变异最大。 持续性感染: PRRSV的持续性感染包括感染猪只体内病毒的持续存在和污染场内感染猪群的持续存在。 在人工感染猪,感染后2~3周内出现病毒血症。 病毒血症的持续时间随感染动物的年龄和感染病毒的剂量而变化,最长可以持续6~8周。 抗体依赖性病毒增强作用: 中和抗体在高水平时对病毒存在中和作用。 在亚中和抗体水平存在的情况下、病毒在细胞上的复制能力反而增强。 抗原抗体复合物与PAM的Fc受体结合,促进病毒进入细胞。 免疫抑制与继发感染: 原发性靶器官:肺脏。 靶细胞:PRRSV导致猪肺
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