实验动物采血完全指南.docVIP

实验动物采血完全指南凡用血量较少的检验如红、白细胞计数、血红蛋白的测定，血液涂片以及酶活性微量分析法等，可刺破组织取毛细血管的血。当需血量较多时可作静脉采血。静脉采血时，若需反复多次，应自远离心脏端开始，以免发生栓塞而影响整条静脉。例如，研究毒物对肺功能的影响、血液酸碱平衡、水盐代谢紊乱，需要比较动、动脉血氧分压、二氧化碳分压和血液pH值以及 K+、Na+、CI-离子浓度，必须采取动脉血液。 采血时要注意：采血场所有充足的光线；室温夏季最好保持在25-28，冬季，15-20为宜；采血用具有采用部位一般需要进行消毒；采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥；若需抗凝全血，在注射器或试管内需预先加入抗凝剂.１．取少量血 ａ．尾静脉　　 大鼠、小鼠 　 ｂ．耳静脉 　　兔、狗、猫、猪、山羊、绵羊 ｃ．眼底静脉丛 　兔、大鼠、小鼠 ｃ．舌下静脉 　　兔 ｄ．腹壁静脉 　　青蛙、蟾蜍 ｅ．冠、脚蹼皮下静脉 　鸡、鸭、鹅 ?? ２．取中量血 ａ．后肢外侧皮下小隐静脉　　　狗、猴、猫　 ｂ．前肢内侧皮下头静脉 　　　　狗、猴、猫 ｃ．耳中央动脉 　　　　兔 ｄ．颈静脉 　　　狗、猫、兔 ｅ．心脏 　　　豚鼠、大鼠、小鼠 ｆ．断头 　　　大鼠、小鼠 ｇ．翼下静脉 　　鸡、鸭、鸽、鹅 ｈ．颈动脉 　　　鸡、鸭、鸽、鹅 ?? ?? ３．取大量血 ａ．股动脉、颈动脉 　　狗、猴、猫、兔 ｂ．心脏 　　　　　　　狗、猴、猫、兔 　 ｃ．颈静脉 　　　马、牛、山羊、绵羊 ｄ．摘眼球 　　　大鼠、小鼠 采动物品种 　最大安全采血量(ml) 最小致死采血量(ml) 小 鼠 　　　　　　　　0.2 　　　　　　　0.3 大 鼠 　　　　　　　　　1 　　　　　　　 2 豚 鼠 　　　　　　　　　 5 　　　　　　　10 兔 　　　　　　　　　　10 　　　　　　　　40 狼 狗 　　　　　　　　 100 　　　　　　　　500 猎 狗 　　　　　　　　 50 　　　　　　　　　200 猴　　　　　　　　　　 15 　　　　　　　　　60割(剪)尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。 2.鼠尾刺血法 大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查)，可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集10～50mm3。如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。 3.眼眶静脉丛采血 采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部(大鼠采血需带上纱手套)，应防止动物窒息。当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血。右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈(3～4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径0.5-1.0mm)，使采血器与鼠面成45的夹角，由眼内角刺入，针头斜面先向眼球，刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。刺入浓度，小鼠约2～3mm，大鼠约4～5mm。当感到有阻力时即停止推进，同时，将针退出约0.1-0.5mm，边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管中，当得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，同时，将采血器拔出，以防止术后穿刺孔出血。 若技术熟练，用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮换更好。体重20-25g的小鼠每次可采血 0.2-0.3ml；体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml，可适用于某些生物化学项目的检验。 4.断头取血 采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤，并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2-4/5的颈部前剪断，让血自由滴入盛器。小鼠可采用约0.8～1.2ml;大鼠约5-10ml。 5.心脏采血 鼠类的心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故少用。活体采血方法与豚鼠相同。若做开胸一次死亡采血，先将动物作深麻醉，打开胸腔，暴露心脏，用针头刺入右心室，吸取血液。小鼠约0.5-0.6ml；大鼠约0.8-1.2ml。 6.颈动静脉采血 先将动物仰位固定，切开颈部皮肤，分离皮下结缔组织，使颈静脉充分暴露，可用注射器吸出血液。在气管两侧分离出颈动脉，离心端结扎，向心端剪口将血滴入试管内。 7.腹主动脉采血 最好先将动物麻醉