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秋茄實验方法与步骤
胁迫前将秋茄苗(半年)从花盆中取出,先用自来水冲洗干净,再用蒸馏水和超纯水清洗,用滤纸擦干后放入装有4L胁迫液(浓度分别为0,0.2;1;10;50ppm的Hg2+)的桶中胁迫5天,每桶5-10株幼苗。每处理重复三次,共计15盆,约150棵幼苗。测定指标:一、幼苗叶片中Hg的分级 二、植物体内汞形态分析 三、叶绿素含量的测定 四、抗氧化酶的测定 五、丙二醛含量的测定 六、植物络合素的测定(GSH和NPT)
具体方法步骤如下:
一、幼苗叶片中Hg的分级
将叶片清洗干净后(自来水+蒸馏水+超纯水),取1g叶片去除叶脉,在-3.5Kpa的压力下,用3mlpH6.5的50mM MES-Tris缓冲液真空抽滤渗透2次,滤液至于锥形瓶中,中间放气1次(大于2min),然后在85ml?美国进口的离心管(15ml离心管)中4000g,4度下离心15min,得到上清液即质外体汁液,将上清液转移至试管(依据量的多少看定容到多大容量瓶)中测定汞含量。将残叶于-20度冰箱冷冻2天,自然解冻后,于15ml离心管中4000g,4度下离心15min,然后用乙醇洗涤残叶离心收集汁液,重复2次,合并3次获得的汁液为共质体组分,最后残渣部分为细胞壁。细胞壁成分用硝酸消解后测定汞含量(pH6.5的50mM MES-Tris缓冲液的配置:MES= 2-(N-吗啡啉)乙磺酸三羟甲基氨基甲烷
三、叶绿素含量的测定
混合液的配置:用纯丙酮、无水乙醇和蒸馏水按4.5:4.5:1的比例配成混合液备用。
叶绿素浸提:选取新鲜成熟叶片,去除中脉剪碎混匀,称取约0.15 g叶片放入15mL 离心管中,加入10mL混合备用液,振荡后避光保存。当观察到叶片组织变白时,进行光密度测定。
叶绿素含量测定:取3mL叶绿素叶绿素浸提液,盛入10mm比色皿中,用混合液作对照。用分光光度计测定645nm和663nm的光密度值,根据以下公式计算叶绿素含量:
Ca(mg/g)=[12.7×OD663-2.69×OD645] ×V÷1000÷W
Cb(mg/g)=[22.9×OD645-4.86×OD663] ×V÷1000÷W
Ca+b(mg/g)=[8.02×OD663+20.20×OD645(2.3)] ×V÷1000÷W
V是浸提液的最终体积 W是叶片鲜重
四、抗氧化酶的测定
4.1酶液的提取
分别取相对稳定的1g叶片和根尖样品,剪碎,在预冷的研钵中分次加入0.05 mol/L预冷的磷酸缓冲液(pH7.8)5ml以及少量的PVP和少量石英砂于冰浴下研磨,转移至15ml离心管中,再用5ml缓冲液清洗研钵中的残余。匀浆在高速冷冻离心机上4℃19000×g离心10min,上清液用于酶系活性测定。(提取的酶液即为10ml)
4.2可溶性蛋白含量测定
按照李合生等的方法用考马斯亮蓝G-250进行染色,在波长为595nm处进行比色。用牛血清蛋白作为标准蛋白。
试剂:标准蛋白质溶液:100μg/mL牛血清白蛋白:称取牛血清白蛋白25mg,加水溶解并定容至100mL,吸取上述溶液40mL,用蒸馏水稀释至100mL即可。
考马斯亮蓝G-250溶液:称取100mg考马斯亮蓝G-250,溶于50mL 90%乙醇中,加入100mL 85%(w/v)的磷酸,再用蒸馏水定容到1L,贮于棕色瓶中,常温下可保存一个月。
仪器:722分光光度计,研钵,烧杯,量瓶,移液管,具塞刻度试管
标准曲线制作表
试管号 1 2 3 4 5 6 蛋白标准溶液/ml 0 0.20 0.40 0.60 0.80 1.00 蒸馏水量/ml 1.00 0.80 0.60 0.40 0.20 0 考马斯亮蓝/ml 5 5 5 5 5 5 蛋白质含量/μg 0 20 40 60 80 100
(1)标准曲线制作:取6支具塞试管按表所列加入各试剂,摇匀。放置3min,用1cm光径比色皿在595nm波长比色。以牛血清蛋白含量为横坐标,以吸光度为纵坐标,绘制标准曲
(2)样品测定:取酶提取液40μl,置于具塞试管中,加入pH7.8的磷酸缓冲溶液至总体积为1ml,加入5 ml考马斯亮蓝溶液,摇匀,静置3min。595 nm波长比色,比色反应在1 h内完成。
(3)计算:根据样品提取液的吸光度,从标准曲线中查出相应的蛋白质含量,按下式计算样品中蛋白质含量。
P=(C×V)/(W×Vt)
C----查得的蛋白质含量(由标准曲线求得),μg;
V----提取液总体积,ml;
Vt----测定时所吸取的体积,ml;
W----样品重,g;
P ----蛋白质含量(鲜重),μg/g。
4.3超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定
采用氮蓝四唑(NBT)法测定。
试剂:0.05mol/L 磷酸缓冲液(pH 7.8)
130mmol/
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