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摘要
目的和意义:CRISPR(clusteredregularlyinterspacedshort
palindromicrepeats)-Cas(CRISPRassociatedprotein)系统是是一种
适应性很强的天然原核防御系统,可以抵抗入侵的病毒和质粒。
CRISPR-Cas系统从发现到功能的确定共经历了20余年的时间,近年
来其基本结构和作用机制逐渐得到阐明。目前研究表明,自然界中的
CRISPR-Cas系统根据效应复合物的组成形式不同,可将其分为第一
大类和第二大类:一类CRISPR-Cas系统利用多Cas蛋白效应复合物
来识别和切割靶标核酸,包括Ⅰ、Ⅲ和Ⅳ型;二类CRISPR-Cas系统利
用单个较大的Cas效应蛋白发挥作用,包括Ⅱ、Ⅴ和Ⅵ型。其中,靶
向RNA的系统包括一类中的Ⅲ型系统和二类中的Ⅵ型系统。尽管
DNA靶向系统已经发展成为一套强大的遗传修饰工具,但靶向RNA
的CRISPR-Cas系统近几年才作为可编程的工具出现。作为生物医学
研究和基因治疗的强大遗传工具,由Cas13蛋白和crRNA组成的二
类VI型效应器已占据领先地位。目前,这一颠覆性技术的“脱靶效
应”一直是阻碍其临床应用的关键障碍之一,所以迫切需要发现兼具
高特异性和低细胞毒性的Cas效应蛋白。2019年,Ⅲ-E型CRISPR-
Cas系统被发现。随后,两项研究确定了Ⅲ-E型CRISPR-Cas系统的
特征,分别被Özcan等人称为Cas7-11,被vanBeljouw等人称为
gRAMP,并证明了它们作为高度特异、可编程、一体化RNA靶向系
统的适用性。Cas7-11效应蛋白以其结合的crRNA为导向,在相隔6
个核苷酸的两个位置促进靶RNA的高度序列特异性切割。该系统的
发现为序列特异性RNA打靶提供了一种新的工具,可用于基因敲低
和基因编辑,且脱靶效应可忽略不计,细胞毒性低。同时该系统的另
外一个独特之处是它能够与另外一个被称为TPR-CHAT的Caspase相
关的蛋白酶系统偶联,激活并特异性切割下游效应蛋白,进而诱导原
核细胞凋亡及共同参与宿主的病毒免疫进程。Cas7-11蛋白可与
crRNA和TPR-CHAT蛋白形成稳定的复合物,被称之为Craspase复
合体。鉴于该系统在生物医学和治疗应用方面具有广阔前景,Craspase
复合体有望成为基因治疗和生物医学研究的工具,但目前人们对其调
控机制知之甚少。为了解释第一大类CRISPR系统中效应蛋白从多组
i
分向单一组分的演化,并提供了一种兼具高特异性和低细胞毒性的新
RNA编辑工具CRISPR-Cas7-11,以及Craspase复合体进一步推动
RNA编辑技术的发展和临床应用转化,了解其调控机制显得至关重
要。
研究方法与研究成果:为了研究Craspase复合体调控的结构基
础,本实验研究了来自Desulfonemaishimotonii的III-E型CRISPR基
因座,获得了Cas7-11和TPR-CHAT的基因序列。为了得到复合物
Cas7-11-crRNA,通过将含有Cas7-11基因的质粒和含有crRNA基因
质粒共转,并借助冷冻电镜技术得到了分辨率为3.4Å的Cas7-11-
crRNA二元复合物结构,以及分辨率为2.5Å的缺乏Cas11结构域的
Cas7-11-crRNA二元复合物结构;为了得到复合物Cas7-11-crRNA-
TPR-CHAT,本实验构建了两个载体共转并进行蛋白的表达和纯化,
并通过冷冻电镜技术得到了两种结构,分别是分辨率为2.8Å的Cas7-
11-crRNA-TPR-CHAT的三元复合物结构,以及分辨率为
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