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酶工程 第四章 酶的提取与分离 2013-3-苗条
第四章 酶的提取与分离 酶的提取(extraction)与分离(separation,isolation)纯化(purification)是指将酶从细胞或其他含酶原料中提取出来,再与杂质分开,而获得所要求的酶制品的过程。 主要内容包括细胞破碎,酶的提取,离心分离,过滤与膜分离,沉淀分离,层析分离,电泳分离,萃取分离,浓缩,干燥、结晶等 酶分离纯化路线 第一节 细胞破碎 cell disruption 胞外酶:细胞内产生以后,可以分泌到细胞外的酶 胞内酶:合成以后不分泌到细胞外,仍然存于细胞内的酶 溶酶:游离在细胞内 结酶:牢固与膜或细胞颗粒结合在一起 不同类型细胞产酶 动物细胞多为——胞外酶 植物细胞多为——胞内酶 微生物细胞为——胞外酶、胞内酶 胞外酶提取: 盐析、沉淀等从发酵液中沉淀酶,制成酶泥。 胞内酶提取: 收集菌体,破碎细胞后提取。 结酶:打断酶蛋白和细胞颗粒结合。 动物细胞需剔除结缔组织、脂肪组织等 植物材料如种子应去壳,以免单宁等物质着色污染。 细胞破碎方法及其原理 一、机械破碎法 二、物理破碎法 三、化学破碎法 四、酶促破碎法 第二节 提取 extraction 酶的提取是指在一定条件下,用适当的溶剂处理含酶原料,使酶充分溶解到溶剂中的过程。也称为酶的抽提。 一、酶提取的方法 二、影响酶提取的主要因素 1、温度 温度↑,酶的溶解度 ↑,酶分子的扩散速度 ↑ 温度过高,酶容易变性失活 提取时温度不宜过高。有机溶剂提取时,温度在0~10℃。 有些酶对温度的耐受性较高,如酵母醇脱氢酶、细菌碱性磷酸梅、胃蛋白酶等,可在37℃或更高一些温度下提取 在不影响酶的活性的条件下,适当提高温度,有利于酶的提取。 2、pH值 溶液的pH值对酶的溶解度和稳定性有显著的影响 为了增加酶的溶解度,提取时溶液的pH值应该远离酶的等电点 但是除了酸溶液提取或碱溶液提取者以外,提取时溶液的pH值不宜过高或过低,以防止酶的变性失活 3、提取液的体积 提取液 ↑,提取率 ↑ 过量的提取液,使酶浓度降低,对进一步的分离纯化不利 提取液的用量一般为含酶原料体积的3~5倍。 分次提取 适当搅拌 加保护剂(底物,辅酶,抗氧化剂等) 第三节 沉淀分离 定义:沉淀分离就是改变某些条件或者加入某些物质, 使酶的溶解度降低,而从溶液中沉淀析出,与其他物质分离的技术过程。 沉淀分离主要方法 一、盐析沉淀法 简称盐析法,是利用不同蛋白质在不同的盐浓度条件下溶解度不同的特性,通过在酶液中添加一定浓度的中性盐,使酶或杂质从溶液中析出沉淀,从而使酶与杂质分离的过程。 应用最早、至今广泛使用 主要用于蛋白类酶的分离纯化。 1、基本原理(盐溶和盐析) 向蛋白质或酶的水溶液中加入中性盐,可产生两种现象: 1) 盐溶(salting in) : 低浓度的中性盐增加蛋白质的溶解度。 2) 盐析(salting out) : 高浓度的中性盐降低蛋白质的溶解度。 原因: 加入少量盐↑,蛋白质上极性基团↑,蛋白质溶解度↑:盐溶。 高盐浓度,盐离子与蛋白质分子争夺水分子,除去蛋白质的水合外壳,降低溶解度而沉淀。 不同蛋白质分子量、表面电荷不同,在不同盐浓度下沉淀,逐渐增大盐浓度,不同蛋白质先后析出,称分段盐析。 2、溶解度影响因素 酶在溶液中的溶解度与溶液的离子强度关系密切,可表示为: 在温度和pH值一定的条件下,S0为一常数。 某酶或蛋白质,在温度和pH值等盐析条件及所使用的盐确定(即β 、Ks确定)之后,酶或蛋白质的溶解度决定离子强度I。 离子强度I:指溶液中离子强弱的程度,与离子浓度和离子价数有关。即: 例如,0.2mol/L的(NH4)2SO4溶液,其中,铵离子浓度为2×0.2mol/L,价数为十1;硫酸根离子浓度为0.2mol/L,价数为十2;其离子强度为: 3、分段盐析 Ks 分段盐析:在一定的温度和pH值条件下(β为常数),根据不同蛋白质Ks 的不同,通过改变离子强度或盐浓度(即改变I 值)使不同的酶或蛋白质分离的方法。 β 分段盐析:在一定的盐和离子强度的条件下(I 为常数),通过改变温度和pH值,使不同的酶或蛋白质分离的方法。 4、盐的选择 常用的中性盐有硫酸铵、硫酸钠、硫酸钾、硫酸镁、氯化钠和磷酸钠等 硫酸铵 溶解度大 25℃时,溶解度为767 g/L;在0℃时,溶解度为697 g/L) 不影响酶的活性 分离效果好 价廉易得 盐浓度的表示 饱和度 例如,70 mL酶液加入30 mL饱和硫酸铵溶液,则混合溶液中硫酸铵的饱和度为30/(30十70) =0.3。 饱和硫酸铵溶液的配制方法:在水中加入过量的固体硫酸铵,加热至50~60℃,保温数分钟,趁热滤去过量未溶解的硫
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