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实验聚丙烯酰胺凝胶电泳
实验7 聚丙烯酰胺凝胶电泳 原理 一 聚丙烯酰胺凝胶电泳(polyacrylamide gel electrophoresis,简称PAGE),由称盘状电泳。这种电泳是在区带电泳的基础上,以孔径大小不同的聚丙烯酰胺凝胶作为支持物,采用电泳基质的不连续体系(即凝胶层的不连续性、缓冲液离子成分的不连续性、pH的不连续性及电位梯度的不连续性),使样品在不连续的两相间积聚浓缩成很薄的起始区带(厚度为10-2cm),然后再进行电泳分离。 圆盘电泳名称来源即由于此法的原理是依靠基质的不连续性(discontinuity),凑巧在垂直柱形凝胶上分散出的区带也很象圆盘状(discoid shape),取“不连续性”和“圆盘状”的英文字头“disc”。因此英文名称为“disc electrophoresis”,中文直译为盘状电泳。 仪器装置:如图A所示,上下两个槽为圆形或方形,其中注入缓冲液(图中曲线表示缓冲液面)。上下槽的缓冲液分别有正负电极通入。下槽外壳在必要时可通入冷水促使降温,水流方向用箭头表示。上槽底部有许多小孔,可插入装有聚丙烯酰胺的玻璃管。 图A 在圆盘电泳过程中有三种物理效应:①样品的浓缩效应,②凝胶的分子筛效应,③一般电泳分离的电荷效应。由于这三种物理效应,使样品分离效果好,分辨率高。下面就圆盘电泳过程中的三种物理效应的原理加以说明: 样品的浓缩效应:由于电泳基质的4个不连续性,使样品在电泳开始时,得以浓缩,然后再被分离。(1)凝胶层的不连续性:浓缩胶:为大孔凝胶,有防止对流的作用。 分离胶:为小孔凝胶,也有防止对流的作用。样品在其中进行电泳和分子筛分离。 蛋白质在大孔凝胶中受到的阻力小,移动速度快。进入小孔凝胶时遇到的阻力大, 速度就减慢了。由于凝胶的不连续性,在大孔胶与小孔胶的界面处就会使样品浓缩, 区带变窄。(2)缓冲离子成分的不连续性。(3)电位梯度的不连续性。(4)pH的不连续 性:在浓缩胶和分离胶之间有pH的不连续性,浓缩胶应有的pH应为8.3,分离胶应 有的pH为8.9。 分子筛效应:分子量或分子大小和形状不同的蛋白质通过一定孔径的分离胶时,受阻滞的程度不同,因此表现出不同的迁移率,即所谓的分子筛效应。即使净电荷相似,也就是说自由迁移率相等的蛋白质,也会由于分子筛效应在分离胶中被分开。 此处分子筛效应是指样品通过一定孔径的凝胶时,小分子走在前面,大分子走在后面。而在柱层析方法中的分子筛效应,则是大分子通过凝胶颗粒之间的缝隙先流出来,而小分子则通过凝胶颗粒内的孔道后流出。 电荷效应:蛋白质混合物在凝胶界面处被高度浓缩,堆积成层,形成一狭小的高浓度的蛋白质区,但由于每种蛋白质分子所载有的电荷不同,因而迁移率不同。承载有效电荷多的,泳动的快,反之则慢。因此各种蛋白质就以一定的顺序排列成一个个的圆盘状。在进入分离胶时,此种电荷效应仍起作用。 二 聚丙烯酰胺凝胶的性能及制备原理 性能:聚丙烯酰胺的机械强度好,有弹性,透明,相对地比较稳定,对pH和温度变化较稳定,在很多溶剂中不溶,是非离子型的,没有吸附和电渗作用。原料成分要采用高纯度制品,通过改变浓度和交联度,可以控制孔径变动在极广泛的范围,并且制备凝胶的重复性好,由于纯度高及不溶性,因此还适合于少量样品的制备,不致污染样品。 制备原理:聚丙烯酰胺凝胶是用丙烯酰胺(acrylamide 简称Acr)和交联剂亚甲基双丙烯酰胺(N,N,N,’N’-methylene bisacrylamide简称Bis)在催化剂的作用下聚合而成。 聚丙烯酰胺凝胶聚合的催化体系有两种: (1)化学聚合:化学聚合的催化剂多采用过硫酸铵(ammonium persulfate简称AP)或过硫酸钾,此外还需要一种脂肪族叔胺作为加速剂,最有效的加速剂为N,N,N’,N’- -四甲基乙二胺(N,N,N,’N’-tetramethyl ethylenediamine,简称TEMED),其次为三乙醇胺及二甲氨基丙腈(3-dimethylaminopropionitrile,简称DMPN)。在叔胺的作用下,由过硫酸铵形成的氧的自由基,后者又使单体形成自由基,从而引发聚合作用。叔胺要处于自由碱基状态下才有效,所以在低pH时常会延迟聚合作用。分子氧阻止链的延长,妨碍聚合作用,一些金属也能抑制聚合作用。冷却可以使聚合速度变慢。通常控制这些因素使聚合在1小时内完成,以便使凝胶的性质稳定。 当聚合反应开始时,过硫酸铵溶于水产生自由基S2O82-→2SO42-,这些自由基活化TEMED使之形成带不成对电子的活化分子。活化的TEMED与丙烯酰胺分子或甲叉双丙烯酰胺
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