设计性实验神经体液对动脉血压和呼吸运动的调节.docVIP

神经体液对动脉血压和呼吸运动的调节 [目的要求]?? ??? 1．学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法。??? 2．观察神经、体液因素对心血管活动的影响。[基本原理]??? 在正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈动脉窦—主动脉弓压力感受性反射尤为重要。此反射既可使升高的血压下降，又可使降低的血压升高，故有血压缓冲反射之称谓。家兔的主动脉神经在解剖上独成一支，易于分离与观察其作用。??? 本实验是应用液导系统直接测定动脉血压。即由动脉插管与压力传感器连通，其内充满抗凝液体，构成液导系统，将动脉插管插入动脉内，动脉内的压力及其变化，可通过封闭的液导系统传递到压力传感器，并由计算机采集系统记录下来。[动物与器材]??? 家兔、兔手术台、常用手术器械、止血钳(4～6把)、眼科剪、支架、双凹夹、气管插管、动脉插管、三通管、动脉夹、计算机采集系统、压力传感器、保护电极、照明灯、纱布、棉球、丝线、注射器 (1 ml、5 ml、20 m1)、生理盐水、4％柠檬酸钠、20％～25％氨基甲酸乙酯、肝素(200 U／ml)、肾上腺素(1：5 000)、乙酰胆碱(1：10 000)。[方法与步骤]1．实验仪器的准备??? 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2．连通液导系统并制压??? 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4％柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体(不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管)后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住(注意：液导系统内不可有气泡)。继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。当加压到120 mmHg时即可关闭三通管。观察压力是否发生变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。调节血压显示器的灵敏度，使30～130 mmHg的变化都能在显示器上明显地反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。3．动物的准备1)麻醉动物 ??? 取家兔一只，称重并剪去耳缘静脉上的被毛。用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注20％(或25％)氨基甲酸乙酯(／kg体重)进行麻醉。注射时注意：先从耳缘静脉尽可能远心端注射(第一次注射不成功时，可稍向近心一些注射)，注射时速度要慢，并随时观察动物情况。当动物四肢松软、呼吸变深变慢、角膜反射迟钝时，表明动物已被麻醉，即可停止注射。2)固定与剪毛??? 将动物背位固定于手术台上，用剪毛剪将颈部手术野的被毛剪去，即可进行手术。3)切开皮肤??? 术者一手的拇指和示指按住家兔颈部两侧，另一手持手术刀，在紧靠喉头下缘，沿颈部正中线作一长约5～7cm的皮肤切口。然后用止血钳或手术剪分离皮下结缔组织后，夹住少许皮肤并向两侧分开创口。4)分层分离肌肉??? 术者与助手分别持止血钳轻轻提起少许气管正上方的肌肉(距离要尽可能近)，然后用手术剪在两止血钳夹住的肌肉之间，纵向(沿肌肉纤维走向)将肌肉层剪开一个小口(亦可用止血钳创开口)。用剪刀或止血钳将创口纵向扩大，再用止血钳夹住少许肌肉，向两侧分开肌层。继续用两把止血钳夹住下层气管上方的少许肌肉，轻轻提起，同法剪开并扩大肌肉创口。如此层层分离肌肉，直至看见肌肉层下方的气管(如果创口不够大，亦可用两手示指深入创口后再向前后方撕裂肌膜，使创口扩大)。用止血钳向气管两侧拉开最后一层肌肉，暴露出气管手术时，注意切口不可偏离气管上方，不可横向剪断肌肉，以免造成血管断裂而出血。切口也不要过于扩大，以免造成气胸。如果发现肌肉或血管有少量出血，可用浸过温热生理盐水的纱布(不可过湿)轻轻按压止血；如果出血不止，应立即用止血钳夹住出血部位，然后用棉线结扎止血。 5)分离主动脉神经??? 家兔颈部的神经、颈总动脉被结缔组织膜包在一起，形成血管神经束，位于气管两侧，其腹面被胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌所覆盖。术者用拇指和示指轻轻捏住分离的肌肉和皮肤，使示指向上顶而拇指向外翻，即可将血管神经束翻于示指之上。用弯头玻璃分针轻轻划开局部结缔组织束膜，仔细辨认3种神经与颈总动脉(图4—19)：颈总动脉呈红色，有波动，壁有较强的弹性；迷走神经最粗，有较好的韧性，色洁白，一般位于外侧；交感神经较细，略呈灰色，一般位于内侧；主动脉神经最细，一般位于两神经之间。由于主动脉神经纤细，离开神经、动脉束的包膜后则难以分辨，所以应在原自然位置首先找到，并用玻璃分针沿纵向轻轻划动，分离出2 cm左右(此神经的韧性很差，易于拉断，分离