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pierce生物技术在蛋白质组学中的应用

Pierce生物技术在蛋白质组学中的应用 PIERCE Technical Focus: 有机合成,化学偶联,表面化学和分析化学 Product Focus: 分子生物学:各种化学发光Blotting,EMSA,RPA, 蛋白质组学:蛋白抽提, 蛋白定量,纯化,样品制备,功能研究以及各种染色试剂和预染Markers 免疫学 :抗体制备,纯化,片断化,分型和修饰 交联化学:cross-linker,生物素化试剂……等分子标记试剂 Pierce生物技术在分子生物学和蛋白质组学中的应用内容包括 以下三个方面: 1.Western Blotting的问题与对策 2.蛋白质提取,染色和定量 3.蛋白质样品制备之高效透析,一步脱盐,超级浓缩及RED 1.Western Blotting的问题与对策 Western Blotting方法选择 检测系统比较 检测方法 影响Western blotting成功的要素 常见问题分析与对策 Western Blotting方法一 直接法: 优点: 1.快速(一种抗体) 2.没有二抗交叉反应引起的非 特异性条带 缺点: 1.免疫反应性降低 2.无信号二级放大 3.抗体标记费时昂贵,使用不方便 两种检测酶系统的比较 HRP(辣根过氧化酶) AP(碱性磷酸酶) 大小 40Kd 140Kd 最佳酶活性 PH:5-7 PH:8-10 酶活和二抗特异性 好于AP 抑制剂 氰化物, 硫化物 叠氮钠 氰化物, 砷酸盐,有机磷, 二价阳离子螯合剂 稳定性 零度以下稳定 零度以下不稳定 底物 很多 部分 动力学特性 快速 慢 价格 便宜 昂贵 检测方法及特点 化学发光法: 灵敏、快速、高效、无害、特异性高 化学显色法: 方便、有毒、灵敏度较低、不易保存 同位素法 : 灵敏度高、不安全、 环境污染、不方便和半衰期短 荧光底物法 影响Western blotting成功的要素 蛋白抽提/样品制备/电泳 膜的选择和转膜 封闭液的选择和封闭条件的优化 一抗和二抗的选择以及稀释倍数的优化 “通用”二抗 合适的底物:发光或显色底物 曝光时间的掌控 X- 光片,信号增强剂 Striping 抗体剥离buffer Eraser it底片背景去除剂 封闭液的选择和封闭条件的优化 封闭液的选择 1、无生物素,无血清蛋白 2、无交叉反应 3、1-15分钟封闭时间 4、10-20:1的信噪比 封闭条件的优化 1、时间 2、温度 3、去污剂 底物的选择: 灵敏度,经济,方便与否 发光底物:HRP 和AP底物系统: 显色底物:HRP 和 AP底物系统: 底片和曝光-成败的最后关头 底物与膜孵育 X- 光片 曝光时间的掌握 显影和定影液 信号增强剂 抗体剥离缓冲液 底片背景去除剂 常见问题 比较均一的高背景 斑点、发泡式或闪烁式的高背景 信号弱或者无信号 非特异性条带 弥散型条带 白色条带、黑点或信号下降太快 (一)Poppers蛋白质提取—细胞, 组织裂解和蛋白提取的一场革命 传统的细胞裂解方法:①机械法,容易引起蛋白质变性和聚集②匀浆破碎法,需要低温进行③研磨法 蛋白回收率低④超声破碎法,需要额外设备⑤反复冻融法。 Poppers:基于 Pierce专有技术用于细胞裂解和核酸、蛋白抽提的高效方法,主要有以下几种: B-PER?, T-PER?, M-PER?, Y-PER,I-PER,P-PER 1. M-PER?培养细胞总蛋白提取试剂 无须刮擦收集细胞,温和裂解细胞和溶解蛋白 适合high-throughput细胞裂解(24,96 well) 适用范围广 非变性剂裂解,与下游分析相容性好 蛋白收率高(25-20%via冻融法和超声法) 可透析 2.T-PER?动物组织总蛋白提取试剂 温和可透析:25mM N-二(羟乙基)甘氨酸, 150mMNaCI 相容性好:可加入蛋白酶抑制剂、螯合剂、还原剂和盐 可用于各种下游分析 操作简单 样品:T-PER? 1:20(W/V) 加入裂解液,匀浆 10000rpm离心取上清 3.B-PER?细菌总蛋白提取试剂 非离子型去污剂,温和裂解 高效快速-10min 无须昂贵设备:离心分离 相容性好:能用于GST,His等亲和纯化 可加入蛋白酶抑制剂、螯合剂、还原剂和盐 可透析,便于

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