临床标本检验前质量控制演稿.ppt

常规标本的采集 血常规标本的采集 患者血液采集前，应避免剧烈运动，要求患者休息15分钟后进行采血。 EDTA-K2抗凝剂抗凝，抽取量为2ml。 运送、保存：血常规抽取后应立即送检，如不能及时送检应放在2℃～8℃冷藏，保存时间不能超过12h。 血气分析标本的采集 用2ml或5ml消毒注射器，按无菌手术抽取肝素0.2ml将注射器内部全部湿润后全部排出。 抽取动脉血2ml后，用小橡皮封针头。用双手夹住注射器来回搓动后立即送检。 必须在30min内送到实验室，否则延迟送检时间将会影响结果的准确性！ 请注明患者体温和吸氧浓度（是否上呼吸机）。 尿液常规标本的采集 清洁尿道口及周围皮肤。 尿检应避免月经、阴道分泌物、包皮垢、粪便等各种物质的污染。 根据不同的检验目的，应叮嘱病人如何留尿。如24h尿，餐后尿等。 标本留取后应及时送检。 粪便常规标本的采集 采集新鲜标本约2-3g送检。 采集粘液性、脓性、血性有意义的标本。 根据不同的检验目的应用不同的采集方法。 及时送检。 生化检验标本的采集 生化检验血标本采集 无特别要求的标本一般是空腹抽血。 一般生化检验用干燥非抗凝管收集标本，采样量3-5ml。 血氨、乳酸检验用EDTA-k2抗凝管收集标本，采样量2-3ml混匀，请立即送检。 糖化血红蛋白测定需用肝素或EDTA管抗凝，采样量2-3ml混匀。 特别说明 在肌肉注射或静脉输含有葡萄糖或电解质（含钾、钠、氯离子）的液体时，建议3小时以后采集静脉血标本进行这些项目的检验 。 禁止从中心静脉插管、肝素帽等保留的治疗通道中采集血液标本。 止血带使用时间应少于1分钟，抽取血气分析血标本时禁止使用止血带！ 血标本应防止溶血 和脂血。 空腹时间不宜过长（建议8-12h)。 免疫学检验标本的采集 免疫学检验项目血标本采集 抽空腹血，抽血量3-5ml。 用干燥管。 避免溶血和脂血。 根据不同的检验项目选则不同的采血时间。 小结 标本的正确选择、采集和运送是实验室工作准确和有效的前提，是保证实验室质量的重要环节！！！ 临床标本检验前质量控制 检验科：张宁 电话：0376-3880528 相关文件 国际标准化组织在2003年3月正式颁布《医学实验室—质量和能力专用要求》（ISO15189）。 《全国临床检验操作规程》第3版 等。 把整个检验过程划分为分析前质量保证、分析中质量保证、分析后质量保证 。 分析前阶段 按时间顺序：该阶段来自于临床医生的申请，包括检验要求、患者准备、原始样本采集、运送到实验室并在实验室内部的传递，至检验分析开始时结束。 据此定义，分析前阶段质量保证的主要内容为：保证检验项目申请的科学、合理性；根据临床检验医师的要求，患者的病情正确准备；原始样本的正确采集与运送。 以上内容来源于《全国临床检验操作规程》第3版 检验前质量控制占60﹪。 检验中质量控制占25﹪。 检验后质量控制占15﹪。 常见临床标本的 检验前质量控制 临床检验标本的检验前质量控制 培养标本。 常规标本。 生化标本。 免疫标本。 培养标本的采集 血培养标本的正确留取、保存、运送 采集：在寒战出现时或发热初期，抗生素治疗之前以无菌方法从患者肘静脉或股动脉采血。采血量:成人一次采血8~10ml/瓶，儿童为1~3ml/瓶。血液抽出后，立即以无菌操作注入血培养瓶，充分混合后立刻送检。采血后的血培养瓶常温保存≤12h，最好立即送检，切勿冷藏！！ 血培养采集瓶数 采集：一次采集2—3套（一个穿刺点=一瓶需氧瓶+一瓶厌氧瓶即为一套）。 要求从不同部位抽取标本。 采集 静脉穿刺消毒方法：严格按照皮肤消毒步骤操作（酒精30s-安尔碘30s-酒精脱碘）。 培养瓶的消毒：75﹪（60s)酒精消毒橡胶塞。 采集后的标本血瓶橡胶塞上 无需再加任何防护措施。 特别说明 急性脓毒血症：10分钟内从不同部位采2-3套。 急性心内膜炎：1-2h内从不同部位采3套。 亚急性心内膜炎：从不同部位采3套，间隔≥15min，如24h内为阴性，应再采3套。 原因不明发热：从不同部位采2-3套，间隔≥1h，如24h内为阴性，需再采3套。 骨髓培养标本 在应用抗菌药物治疗前，寒战过后高热时，严格无菌操作。 采集骨髓接种于血培养瓶中（儿童瓶为宜），对于少量骨髓可直接接种培养基。 室温运送时间小于或等于2h，室温储存时间小于或等于12h。最好及时送检。 相关导管的采集 用消毒液消毒导管周围皮肤。 无菌操作。 要求采集导管长度5cm。 采集后的导管应置于无菌管内及时送检 （最好15分钟内送到实验室）。 脑脊液培养标本的采集 最好在抗生素治疗前采集标本。 穿刺过程中要严格无菌操作，防止污染。 培养标本的量不少于0.5ml