人体解剖生理学实验基本操作101.pptVIP

人体解剖生理学实验基本操作;常用的实验动物 动物的捉持 动物的秤重 实验动物分组及编号的标记方法 动物的麻醉 实验动物的给药方法 实验动物的取血方法 实验动物的处死方法;常用的实验动物;常用的实验动物;常用的实验动物;常用的实验动物;常用的实验动物;动物的麻醉;实验动物的给药方法;大/小鼠解剖;血液凝固;【实验方法】 1、用乌拉坦将兔麻醉，仰卧固定于兔手术台上，分离一侧颈总动脉，上端用线结扎阻断血液，下端夹上动脉夹，在动脉当中剪一小口，插入细塑料管，结扎插管备取备用。 2、将下列试管准备好试验用品后，每管加入血液2毫升。 试管1 内放少许棉花； 试管2 用石蜡油润滑整个内表面 试管3 不加任何处理 试管4 置于有冰块的小烧杯中 试管5 内加肝素8单位 试管6 内加草酸钾1-2毫克 将多余的血盛于小烧杯中，不断用竹签搅动直至纤维蛋白形?? 3、记录凝血时间：每个试管加血2毫升后，即可开始计时，每隔15秒，将试管倾斜一次，观察血液是否凝固。至血液成为凝胶状不再流动为止，几下所经时间即凝血时。另一烧杯内加入血液后立即用竹签搅动，去除纤维蛋白。5、6号试管，加入血液后，用拇指盖住试管口将管颠倒两次。;将结果及在各条件下的凝血时间按表1填写，并进行解释表1 各条件下凝血时间;血红蛋白含量的测定;【实验方法】 1．血红蛋白计包括①标准比色架，架的两侧镶有两个棕色标准玻璃色柱。②血红蛋白稀释管，有方形也有圆形的。两侧有刻度，一侧以g 为计数单位，对侧以百分率计。 2．用滴管加0.1mol/LHCl 于血红蛋白稀释管内，到刻度10 处。 3．用血红蛋白吸管的尖端吸上个实验中烧杯中的血，吸血至刻度20mm3 处（0.02ml）。 4．用滤纸片或棉球擦净吸管口周围的血液，将吸管插入血红蛋白稀释管的盐酸内，轻轻吹出血液至管底部，反复吸入并吹出稀释管内上层的盐酸，洗涤吸管多次，使吸管内的血液完全洗入稀释管内。摇匀或用小玻璃棒搅匀后，放置10min，使盐酸与血红蛋白充分作用。 5．把稀释管插入标准比色架两色柱中央的空格中，使无刻度的两侧面位于空格的前后方，便于透光和比色。 6．用滴管向稀释管内逐滴加入蒸馏水（每加一滴要搅拌），边滴边观察颜色，直至颜色与标准玻璃色柱相同为止。稀释管上液面的刻度读数即为每100ml 血液血红蛋白的克数。;家兔动脉血压的神经、体液调节;【实验方法】 1. 麻醉和动物固定：兔称重后，按1g／kg体重的剂量由兔耳缘静脉缓慢注入25％氨基甲酸乙酯溶液将动物麻醉。注射过程中注意观察动物的肌张力、呼吸频率及角膜反射的变化，防止麻醉过深。麻醉好的动物仰卧固定于手术台上，注意颈部必须放正拉直。 2. 分离颈部血管和神经：用弯剪刀剪去颈部的毛，作长5—7厘米的正中切口，钝性分离皮下组织和肌肉，即可见到气管，将气管两旁的肌肉拉开，便可在气管两侧的深部找到颈动脉鞘，内有颈总动脉、迷走神经、减压神经和交感神经。仔细辨认并小心分离，在左侧减压神经和交感神经下穿不同颜色湿丝线备用．然后分离双侧的迷走神经和颈总动脉，穿线备用。 3. 动脉插管：分离右侧颈总动脉3厘米左右，近心端用动脉夹夹闭，远心端用线结扎．耳缘静脉注入肝素1ml，然后在结扎的近端剪一斜口，向心脏方向插入动脉插管，用线将插管与动脉扎紧，防止滑脱。放开动脉夹，记录动脉血压。;观察项目 1、观察正常血压曲线。 2、用动脉夹夹闭左侧颈总动脉5—10秒，观察血压变化。 3、刺激减压神经：以中等强度，频率为10-15次/秒，波宽2毫米的连续电脉冲。刺激一次减压神经，观察血压有何变化？然后用两根丝线在该神经中部两处接扎，并在两结扎间将神经切断，分别刺激切断后的神经中枢端和外周端，观察对血压影响有何不同？ 4、刺激迷走神经：结扎并剪断双侧迷走神经，观察血压变化．刺激右侧外周端，观察血压变化。 5、静脉注射去甲肾上腺素：由耳缘静脉注入1／万去甲肾上腺素0.3 ml，观察血压变化。 6、刺激交感神经：结扎并剪断左侧交感神经，观察左侧耳都血管的变化，然后用中等强度电流连续刺激其头端，观察左侧耳部血管变化。;尿生成的影响因素;【实验方法】 1.麻醉：家兔一只，用25%氨基甲酸乙酯（1g/kg）耳缘静脉注射，麻醉后，仰位固定于手术台上。 2.插管：导尿管直接由实验动物的尿道插入，实验动物应选择雄性，插导尿管时用液体石蜡浸润后顺尿道轻轻插入膀胱。插管是若遇阻力，不可强插，应拔出重插。 依次进行下列项目实验。 注意：每项实验前都要记录尿量作为对照。 实验观察待尿流量稳定后，即可进行下列各项实验观察。每项实验开始时，都应先记录一段尿量曲线作为对照；然后进行注射或刺激，并连续记录和观察至效应明显和恢复过程。（组间对照、自身前后对照） （1）自耳缘静脉注射的生理盐水20ml，观察尿量