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影响碘化反应因素: 1.可结合基团数量,及暴露程度; 2.氧化剂性质、反应条件(pH、浓度、温度、反应时间)。 一般来说,在保证一定标记率得前提下,尽可能减少氧化物得用量,以保证标记物得生物活性和免疫活性。 碘化反应种类: 1.氯胺-T法: 方法简便,标记率高,重复性好,试剂易得,是迄今最常用方法之一。 Cl-T(N-氯代对甲苯磺酰胺钠盐):性质温和,在水溶液中水解产生次氯酸,次氯酸氧化碘离子成碘分子。 注意事项: ①氧化剂Cl-T不稳定,临用时配置; ②用量适当; ③反应完需用等量的还原剂偏重亚硫酸钠(Na2S2O5)中和,临用时配置; ④pH在7~8,常用0.2~0.5M磷酸缓冲液; ⑤反应体积适当,50~300μl; ⑥温度和时间,室温1~3min,若4℃,增加时间; ⑦不适用于生物活性不稳定物质,如一些补体、某些激素、酶、受体等。 2.乳过氧化物酶法(LPO): 过氧化物酶作用于H2O2,放出新生态氧,氧化125I-为碘分子。常用乳过氧化物酶。 注意事项: ①用量少,为待标记蛋白的1%; ②pH范围较宽,4~8.5; ③H2O2用量少; ④反应时间30~60min ⑤也能用于各种脂肪、细胞、细胞膜的标记; ⑥过氧化物酶来源困难,标记率低; ⑦酶本身也可能被标记而产生杂质。 3.固相氧化法: 将氧化物或过氧化物酶以固体的形式,或制成固体颗粒,进行液-固氧化反应。 目前常用Iodogen法。 Iodogen:1,3,4,6-四氯3α,6α-二苯-甘脲,氧化剂,与Cl-T同属氯酰胺类。 注意事项: ①Iodogen不溶于水,可用二氯甲烷溶解; ②制备Iodogen涂管(5~25μg/管),封口冷藏; ③无需配置氧化剂、还原剂 ④将反应液倒出或稀释,即终止反应; ⑤对标记物损伤程度小,标记率较高。 4.联接标记法: 间接标记法。先将放射性碘标记到较活泼试剂上,再联接到待标记化合物上。 常用Bolton-Hunter试剂,3-(对-羟基苯)丙酸-N-琥珀亚胺酯(HPNS)。 步骤:①125I标记HPNS;②125I-HPNS上的酰基与蛋白质或多肽上的游离氨基发生缩合反应。 可避免蛋白质与氧化剂直接接触,防止生物活性损伤;对于在体内不稳定的酪氨酸残基碘标记物,提供一种选择。 较麻烦,引入一较大基团会影响示踪性质。 四、32P、33P和35S标记化合物的制备 32P:射线能量较强(1.7MeV),易检测,但辐射危害大,半衰期短(14d),自显影条带有扩散,分辨率低; 35S:能量较低(0.167MeV),半衰期较长(87d),自显影条带清晰,分辨率高,无需特殊防护,自显影前需制成凝胶干胶板; 33P:能量适中(0.25MeV),半衰期为25d,自显影清晰度、分辨率适中,无需特殊防护。 制备方法:化学合成、生物合成、酶促法、同位素交换法。现一般均有商品供应。 第四节 纯化与鉴定 放射性核素检测的灵敏性,应用时的微量,都必需要求标记化合物的放射化学纯度达到一定的高度(至少大于95%),这样才能达到实验目的,结果才可靠。 杂质来源: ①未标记上的游离放射性核素; ②待标记物的不纯物被标记上放射性核素; ③贮存时,由于标记物的不稳定,或发生辐射自分解,产品性质、结构发生变化。 一、标记率的测定 常用纸层析、TLC法测定分析。 (一)原理: 样品中各组分性质不同,在固定相上的吸附能力和在流动相中的溶解度不同,随流动相的移动速度也就不同。 一般随固定相的不同,而有不同的分离效果。 (二)基本操作 1.固定相的选择 根据实验要求或标记物的性质。 2.展开剂的选择 重要因素,直接影响分离效果。根据标记物的性质差异,通过各种极性不同的溶液配伍组成展开剂,以有效分离。 3.点样与展开 样品、参考样,展开距离。 (三)结果测量 1.放射自显影 一般不用。 2.分段测量 常用手段。 3.放射性扫描 快速、简便、直观,但要求一定的活度。 (四)注意事项 1.分离条件要确保各组分有效分离。 2.高比活度样品需加适量载体,防止吸附。 3.放射性浓度低时,可重复点样。 二、分离纯化 层析法──纸层析、薄板层析、柱层析 透析法、电泳法 一般与标记率测定的分离方法一样,根据标记物性质选择固定相、流动相。 三、
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