标本的选择和采集(改)精品.pptVIP

尿液标本 用肥皂和温水彻底清洗外阴或尿道口 女性：分开阴唇，取中断尿 尿液标本 男性：回拉包皮，取中断尿 采集尿标本应与上次排尿间隔2小时！ 尿液标本 导管导尿：用无菌手段将导管插入膀胱，采集流出约15ml后的尿液标本（可能会将尿道口常居菌群带入膀胱而引起医源性感染的危险！） 留置导尿管：消毒导管的采集部分，用注射器无菌采集5-10ml尿液标本 膀胱穿刺：耻骨上皮肤消毒后用无菌注射器作膀胱穿刺 用无菌防漏的容器送检 尿液标本 注意事项: 1.收集尿液的过程中，不要过满避免尿液溢出容器，同时要将无菌杯的盖子盖严实 2.在对患者进行采样讲解时宜采用通俗用语，尽量避免专业术语 眼部的结膜标本 即使只有一个结膜感染也要取两个结膜的标本 拭子要预先用无菌盐水湿润 用拭子在结膜上滚动采样或用刮勺取角膜标本 由于许多情况下眼睛感染所获取的标本量很少，因此要立即送检 粪便标本 自然排便采集：自然排便后挑取其脓血、粘液部分2-3g；液体粪便取絮状物2-3ml 直肠拭子：排泄困难的患者或婴儿，可用直肠拭子采集（无菌棉拭子用生理盐水湿润后插入肛门4-5cm、婴儿2-3cm轻轻转动取出） Garbage in ！ Garbage out！ 正确的检验结果需要您的参与！ 谢谢！ 微生物标本的选择和采集 分析前的质量 微生物实验室对临床科室的作用要发挥的好，首先要保证标本的质量。 标本的质量是检验结果的首要先决条件，也是产生检验报告的“原材料”它的好坏直接决定了产品的质量，标本的质量得不到保证，再好的检验过程也不会产生好的检验结果，甚至会误导临床诊治。 采集标本要注意的问题 标本的有效性选择 采集时机 采集部位 采集方法 标本的采集量 标本的临时保存条件 尽量避免标本被邻近组织的微生物所污染! 标本选择、采集的原则 要避免常居菌群造成的污染 选择正确的部位，采用适当的技术和器具 采集足量的标本（量少会导致假阴性结果） 每份标本要标明患者的信息 标本要放入适宜的容器中 能够反应活动病程! 无临床价值的标本 烧伤创面，伤口(拭子)——送检组织或抽吸物 褥疮(拭子)——送检组织或抽吸物 恶露——不予采用 直肠周围的脓肿(拭子)——送检组织或抽吸物 呕吐物（霍乱除外）——不予采用 脓液及创伤感染分泌物标本 开放性的脓肿或脓性分泌物： 用无菌生理盐水或70%的酒精擦去表面渗出物，用拭子深入溃疡深处确保采集到伤口前沿的标本（采集2支），尽量抽取标本。 封闭性的脓肿： 消毒局部皮肤或黏膜表面后，用注射器抽取脓肿壁部位的标本 从标本采集到送检的时间不要超过2小时! 烧伤及创面标本 在采集标本之前要清洁创面 用灭菌棉拭子取多部位创面的脓液或分泌物，置无菌瓶内（注明采集的部位） （烧伤及创面表面标本的培养可能会产生误导作用，分析时应结合临床症状或其它检查结果） 烧伤及创面标本 注意事项: 1.厌氧菌培养标本应尽可能少的暴露于空气中 2.以穿刺的方式所采集的标本以针筒直接送检， 避免接触环境氧为好 血液及骨髓标本 采血时间： 抗菌药物治疗前，发热初期或高峰期 采血频率： 对怀疑菌血症的成年人，推荐同时在不同部位采集2-3套（每套包括一瓶需氧瓶，一瓶厌氧瓶或者两套需氧瓶）婴幼儿病人，推荐同时在不同部位采集2套，可不做厌氧培养。 血液及骨髓标本 急性脓毒血症： 10分钟内从不同部位采集2-3套 急性心内膜炎： 1-2h从不同部位采集2-3套 亚急性心内膜炎： 从3个分离部位采集3套，时间间隔≥15分钟 血液及骨髓标本 待消毒液晾干、穿刺 血培养瓶塞要消毒1分钟! 血量要足够 血液与肉汤培养基的比例以1:5-1:10 血液及骨髓标本 注意事项: 1.抽血前即应贴好标签，标签不能贴到条形码 2.若不能立即送至实验室，应置于35℃温箱或室温，绝不能放置于冰箱 中心静脉及肾造瘘导管 酒精消毒导管周围的皮肤 以无菌方法取出导管，在导管尖端的5cm处剪断，放入无菌容器 直接送到微生物实验室以防干燥 建议同时采血作血培养 中心静脉及肾造瘘导管 临床意义: 中心静脉及肾造瘘导管是否有细菌生长， 可指导临床医生是否拔出或保留导管 脑脊液标本 腰椎穿刺，采集2-3ml，放入无菌容器中 每份细菌学检验至少需要0.5ml 标本要立即送往实验室 同时也作血液培养 肺炎链球菌或脑膜炎奈瑟氏菌会自溶 不能放冰箱！ 褥疮溃疡标本 用无菌生理盐水清洗表面 选择组织或抽取标本 可用拭子采集伤口底部