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病理科病理标本取材规范
演讲人:
日期:
目录
CATALOGUE
02
取材操作规范
03
标本处理与保存
04
质量控制要点
05
生物安全防护
06
记录与档案管理
01
标本接收与登记
01
标本接收与登记
PART
需确认标本容器密封性良好,无泄漏或破损,标签信息清晰可辨且与申请单完全一致,包括患者姓名、标本类型及部位等关键信息。
完整性检查
接收标准与核对流程
双重核对机制
时效性验证
由接收人员与送检人员共同核对标本数量、类型与申请单的一致性,采用电子扫码系统与人工目视检查相结合的方式确保零误差。
核查标本采集时间与送检时间间隔是否符合科室规定的生物活性保存期限,对特殊标本(如冰冻标本)需优先处理并记录交接时间。
电子化录入标准
录入完成后需由第二人独立复核电子数据与纸质申请单的一致性,重点核对肿瘤定位标记、既往病理号等关键字段。
信息复核流程
条码标签生成
系统自动生成包含二维码的专用病理标签,要求打印清晰度达到300dpi以上,并采用防水防褪色材质确保长期可识别。
采用病理信息系统(LIS)录入时,需逐项填写标本编号、患者ID、临床诊断、取材要求等字段,强制设置必填项防止信息遗漏。
标本信息录入规范
拒收标准及处理流程
明确拒收情形
包括标本严重自溶、固定液不足标本体积10倍、无标识或标识无法辨认、申请单信息矛盾等硬性拒收标准,需书面记录拒收原因。
生物安全处置
对不符合接收标准的传染性标本(如结核组织),需按照三级生物安全标准进行高压灭菌处理,并留存处置记录备查。
临床沟通协议
对可补救的缺陷标本(如未固定),应立即电话联系临床科室明确处理意见,并在系统内记录沟通内容及后续处理方式。
02
取材操作规范
PART
器械消毒与操作台准备
器械灭菌标准
所有取材器械需经过高温高压灭菌处理,确保无菌状态;刀片、镊子等一次性器械需严格密封保存,避免污染。
操作台清洁流程
操作人员需穿戴无菌手套、口罩、护目镜及防水隔离衣,避免生物安全风险。
取材前需用75%酒精擦拭操作台面,铺设无菌吸水垫,并定期更换以防止交叉污染。
个人防护要求
组织定位与切割原则
解剖结构识别
需结合影像学资料与标本解剖标志,明确病变与正常组织的分界,避免误切关键结构。
切割方向规范
沿组织长轴或病变最大截面切割,确保切片能完整显示病变特征;避免斜切或碎切影响病理诊断。
厚度控制标准
组织块厚度需控制在2-3mm,过厚影响脱水包埋效果,过薄可能导致组织破碎。
关键病变取材优先级
恶性肿瘤优先原则
对疑似恶性肿瘤区域需优先取材,确保获取足够代表性组织,避免漏诊高风险病变。
03
标本处理与保存
PART
固定液选择与浸泡时长
作为常规固定液,其渗透性强且能有效保存组织形态,适用于大多数病理标本的固定,需确保组织完全浸没并避免气泡残留。
中性缓冲福尔马林
适用于某些特殊染色或分子检测的标本,需根据检测项目调整浓度和浸泡时间,避免过度固定导致抗原损失。
对于大体积标本或脂肪含量高的组织,需定期更换固定液以确保充分渗透,避免中心区域固定不良。
乙醇类固定液
针对特定组织类型(如睾丸、乳腺等)的固定需求,需严格控制浸泡时长以防止组织过度硬化或染色异常。
特殊固定液(如Bouin液)
01
02
04
03
固定液更换频率
包装标识与分装要求
每份标本容器需标注患者姓名、病理号及取材部位,采用防水标签或激光刻印,确保信息在运输和储存中不脱落或模糊。
唯一性标识
同一患者的多个取材部位需分装于独立容器,并在标签上明确区分,防止交叉污染或诊断混淆。
多部位分装规则
优先选择防漏、耐腐蚀的密封容器,避免使用易碎玻璃瓶,高危标本需加装生物安全警示标识。
分装容器材质
01
03
02
同步录入标本信息至病理信息系统,包括标本接收时间、固定状态及特殊处理要求,便于全程追溯。
电子化记录
04
特殊标本保存条件
冷冻标本处理
需快速置于-80℃超低温冰箱或液氮中保存,避免反复冻融导致冰晶破坏细胞结构,影响后续分子检测结果。
微生物培养标本
需使用无菌容器并在4℃环境下暂存,尽快送检以防止细菌过度繁殖或死亡,干扰病原体鉴定。
骨组织脱钙处理
需根据骨密度选择适宜脱钙液(如甲酸-甲醛混合液),并定期监测脱钙进度,避免过度脱钙影响切片质量。
液态标本(如胸腹水)
需添加抗凝剂并离心后取沉淀物固定,或直接保存于专用细胞保存液中,确保细胞形态完整性。
04
质量控制要点
PART
标本完整性评估
针对肿瘤或病变组织,需通过肉眼观察结合影像学资料明确取材范围,确保关键病变区域被完整包含在取材样本中。
病变区域定位
边缘组织处理
对手术切除标本的切缘进行系统性取材,尤其是恶性肿瘤病例,需评估切缘是否受累,为临床后续治疗提供依据。
需确保送检标本无遗漏或人为损坏,检查时应核对申请单与标
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