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实用汇总报告 实用汇总报告 PAGE PAGE 1 / 6 实验原理 蛋白质印迹是把电泳分离的蛋白质转移到固定基质上，然后利用抗原抗体反应来检测特异性的蛋白分子的技术，包括三个部分： SDS—聚丙烯酰胺凝胶电泳，蛋白质的电泳转移，免疫印迹分析。 SDS—聚丙烯酰胺凝胶电泳主要用于测定蛋白质相对分子质量，SDS 是阴离子去污剂，能断裂蛋白质分子内和分子间的氢键，使分子去折叠，破坏其高级结构。 SDS 与大多数蛋白质的结合比为 1.4:1，由于 SDS 带有大量的负电荷，与蛋白质结合时掩盖了不同种类蛋白质间原有的电荷差别，使各种蛋白质带有相同密度的负电荷，形似长椭圆棒，蛋白迁移率与蛋白质相对分子质量的对数呈线性关系。因此，利用相对分子质量标准蛋白所作的标准曲线，可以求得未知蛋白的相对分子质量。 电泳后蛋白质分子嵌在凝胶介质中，探针分子很难通过凝胶孔，将蛋白质从凝胶转移到固定基质上可以对蛋白质进行免疫检测分析。方法有两种：①水平半干式转移即将凝胶和固定基质似三明治样夹在缓冲液浸湿的滤纸中间，通电 10~30min 可完成②垂直湿式转移即将凝胶和固定基质夹在滤纸中间，浸在转移装置的缓冲液中，通电 2~4h 或过夜可完成。固定基质通常有硝酸纤维素膜、聚偏二氟乙烯膜和尼龙膜。 蛋白质转移到固定化膜上之后，通过蛋白质染料如丽春红 S 检测膜上的总蛋白，或用考马 斯亮蓝检测凝胶上的蛋白剩余量，以验证转移是否成功。用抗体作为探针进行特异性的免疫反应检测抗原蛋白，分为 4 步：①用非特异性、非反应活性分子封阻固定化膜上未吸附蛋白的自由结合区，以防止作为探针的抗体结合到膜上，出现检测时的高背景②固定化膜用专一性的一抗温育，使一抗与膜上的抗原蛋白分子特异性结合③酶标二抗与一抗特异结合④加入酶底物， 适当保温，膜上便可见到颜色反应，检测出抗原蛋白区带。 主要溶液10%分离胶 水 3.3mL 、30% 丙烯酰胺混合液 4.0mL 、1.0mol/L Tris （ pH8.8 ） 2.5mL 、10% SDS 0.1mL、10%过硫酸铵 0.1mL、TEMED 0.004mL 5%浓缩胶 水 2.7mL、30%丙烯酰胺混合液 0.67mL、1.0mol/LTris0.5mL、10%SDS0.04Ml/10%过硫酸铵0.04mL、TEMED0.004mL 1×Tris –甘氨酸电泳缓冲液 Tris 碱 3.03g、甘氨酸 18.77g、SDS 1g，用去离子水定容至 1L 2×SDS 凝胶加样缓冲液 Tris-HCl（pH6.8） 100mmol/L，β-巯基乙醇 10%，10%甘油，0.01%溴酚蓝，10%SDS 转移缓冲液 Tris 2.45g，甘氨酸 11.25g，甲醇 100mL，加去离子水至 1L TBST Tris 1.21g NaCl 8.77g，Tween-20 1mL，加去离子水至 1L Stripping 1.3mL Tris （pH 6.8），4mL10%SDS，140μlβ-巯基乙醇，用水定容到 20mL 实验步骤 SDS—聚丙烯酰胺凝胶电泳 ⑴凝胶配置 ①分离胶的配置：将配置好的分离胶液混匀后迅速倒入胶槽中，至距离短玻璃板顶端约 2cm 处，停止灌胶。检查是否有气泡，若有用滤纸条吸出。然后在胶液界面上加蒸馏水进行水封。15~30min 后，凝胶和水封层界面清晰，说明胶已经聚合完全，然后用滤纸吸取水封层，滤纸切勿接触到凝胶面。（使蛋白样品分离） ②浓缩胶的配置：将配置好的浓缩胶灌注在分离胶之上，直至短玻璃板的顶端，然后插入样品 槽梳子。室温下浓缩胶聚合，约 20~30min。（使蛋白样品浓缩） ⑵蛋白样品的处理 将蛋白样品溶于样品溶解液，终浓度为 0.5~1mg/ml。然后转移到小离心管中，轻轻盖上盖子（不能塞紧，以免加热时液体迸出），在 100℃沸水浴中加热 3min，取出冷却后备用，使用前需要将样品离心除去颗粒物质。暂时用不到的话，可放在﹣ 20℃冰箱长期保存，使用时沸水浴中加热 3min，以除去亚稳聚合态物质。上样前的样品一定要均匀以防电泳时出现纵向条带。 ⑶加样 拔去样品槽梳子，倒入电极缓冲液，没过短板约 0.5cm 以上，若样品槽中有气泡，用枪头挑除。按顺序向凝胶样品槽中加入标准蛋白和未知蛋白样品，每孔的加样量要相同，一般加样体积为 10~30μl，加样时枪头深入到加样槽内，尽量接近底部，记录加样顺序。 ⑷电泳 上槽接负极，下槽接正极，打开直流稳压电源，先 80V 过了浓缩胶后改为 120V，待溴酚蓝指示剂迁移到凝胶下沿 1cm 时停止电泳。 蛋白质的电转移 ⑴水平半干式电转移 ①戴乳胶手套剪滤纸 6 张，滤纸长与宽比 SDS—PAGE 胶各大 1cm。 ②裁剪与 SDS—PAGE 胶长宽相等的 NC 膜。 ③将 3