微生物标本的采集及送检.pptVIP

采集的基本原则 1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检 5.标本容器须无菌，但不得有消毒剂 6.送检标本应注明来源和检验目的 如何提高细菌阳性检出率？ 标本采集时机 标本采集方法 标本的质与量 标本的运送与保存 镜检筛选合格标本（退检制度） 高质量、 多种分离培养基 培养环境 标本分类 1。血液及骨髓标本 2。呼吸道标本 3。泌尿生殖道标本 4。粪便标本 5。脓液及创伤感染分泌物标本 6。穿刺液标本 7。真菌感染标本 血液及骨髓标本 采集及运送 血培养指征 不明原因的发烧(＞38℃)或体温过低(＜36℃) 白细胞增多（ ＞10*109/L），粒细胞减少 休克，皮肤黏膜出血，多器官衰竭，血压降低，CRP升高，呼吸加快 严重的局部感染(脑膜炎，心内膜炎，肺炎，肾盂肾炎，腹部术后感染，…) 心率异常加快 血 液病患者可出现粒细胞减少、血小板减少 采集血培养样本的最佳时间 尽可能在患者寒战和发热高峰30~60分钟内采血 在患者接受抗生素治疗前采血 如患者已经应用抗菌药物进行治疗，应在下一次用药之前采血培养 采血套数及部位 成人“一套” 血培养应该包括需氧瓶和厌氧瓶各一个，也叫“一份” 注意：一次穿刺采血，算“一套”，采集第二套应从另一个穿刺点获得。 儿童一般只做需氧培养，但仍需从多个部位采集多次。特殊患者才考虑厌氧培养。 采血套数及部位 每位患者每次采血最少2套，3套更好 初发患者，绝不能只采1套标本，采集1套无法判断是病原菌还是污染菌。 多个穿刺部位采血。因多部位同时发 生污染的几率较小，便于对结果进判断 采血套数及部位 常规血培养不宜从静脉导管或静脉留置装置中采集，检出污染或定植菌的可能性较大。除非怀疑导管相关性血流感染，需经外周静脉穿刺采集2套血培养，从导管中心或静脉留置口隔膜采集1套血培养，同时做血管内导管尖端（末端5cm）半定量或定量培养 关于标本采集间隔时间 对于急性感染患者，应在5分钟内从不同部位（双臂）分别采集2－3套血培养。 发热原因不明患者，在24小时内应从不同部位采血2~3套，间隔不少于60分钟 可疑急性心内膜炎患者要立即取血作血培养，起始采集3套血培养（每次间隔不少于30分钟），如果24小时内报告阴性，则继续采集2套血培养。 可疑的亚急性心内膜炎患者需在30分钟至1h内连续采集3套标本。然后才开始抗菌药的经验治疗 采集血液量 采血量是影响灵敏度最关键因素 成人一份标本2个培养瓶（需氧＋厌氧），每瓶8－10ml（不少于5ml),共16~20ml；要求至少采两套标本，即40ml。 儿童一般只需采集需氧瓶，在保证采集血量＜1％总血量下，一般不少于2ml， 应先将标本注入需氧瓶，然后再厌氧瓶，采血量不足时应优先保证需氧瓶，因临床90％以上的感染为需氧菌或兼性需氧菌感染 采各种血液标本的先后顺序 尽量不要与其他采血同时进行 血培养对无菌操作的要求比注射、采集生化、凝血等其它标本要高。 所以要最先采集血培养标本。 关于皮肤及培养瓶消毒 1、关于皮肤及培养瓶消毒 推荐使用碘酊、碘伏、70%乙醇、次氯酸作为皮肤消毒剂。 碘町、70%乙醇作用1min 碘伏作用1.5-2min 2、培养瓶的消毒程序： 去掉培养瓶口的塑料瓶盖。 70%酒精消毒血培养瓶橡皮塞子60秒。 自然待干。 将标本注入培养瓶内。 5. 轻轻颠倒混匀标本与肉汤，以避免血液凝集。 培养瓶的储存温度 采集后的血培养应即送检，接种前后的血培养瓶均不得冷藏，更不能冷冻。保存在15－25℃的室温即可，冷藏或冷冻会使一些微生物死亡 尿培养标本 采集及运送 尿培养送检指征 尿路感染、肾结核、泌尿系结石、膀胱排空功能受损或前列腺增生等患者，出现尿频、尿急、尿痛等膀胱刺激症状 肉眼脓尿或血尿，尿常规检查有白细胞或亚硝酸盐阳性 不明原因的发热或留置导管的患者出现发热、尿道口有脓性分泌物等症状 泌尿系统疾病手术前等情况 尿培养采集时间 应选择在抗菌药物应用之前采集尿液。 通常应采集晨起第1次尿液送检，确保尿液在膀胱内停留4小时以上 尿培养标本 清洁中段尿 导尿导管尿 经耻骨上皮肤穿刺采集膀胱内尿液 不能立即送检者，可暂存4℃冰箱，但保存不超过8h 清洁中段尿液 尽量取早晨第一次尿液 嘱患者留取标本的前一天晚上少饮水 女性病人 收集标本前用肥皂水冲洗外阴，再以灭菌清水冲洗尿道口 排出前段后，不停止尿流，采集中段尿 男性病人 翻转包皮，清洗尿道口 排出几毫升后，不停止尿流，采集中段尿 导尿管尿液 集尿袋内的尿液不能用作培养； 导尿管末端的尿液也不能用于培养，因为很难避免没有尿道菌群污染。 留置导管尿液标本常通过专门的采样端口采集，不能把导尿管与尿袋