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MRP―1、MDR1、GST―π mRNA在CD133+肿瘤干细胞中的表达分析 　　[摘要] 目的 分离鉴定CD133+肿瘤干细胞，初步分析MRP-1、MDR1、GST-π在CD133+胶质瘤干细胞多药耐药性中的作用。 方法 采用胶质瘤U251细胞系，磁珠分离、培养CD133+胶质瘤干细胞，RT-PCR技术分析MRP-1、MDR1、GST-π在CD133+胶质瘤干细胞中的表达。 结果 培养的胶质母细胞瘤干细胞表达干细胞标记物Nestin，分化后细胞表达GFAP、β-tubulin；MRP-1、MDR1、GST-π在CD133+胶质瘤干细胞中呈高表达，与CD133-胶质瘤干细胞比较差异有统计学意义（P 　　[关键词] 胶质母细胞瘤；肿瘤干细胞；CD133；耐药 　　[中图分类号] R739.4 [文献标识码] A [文章编号] 1673-9701（2017）05-0012-03 　　脑胶质瘤是常见的原发中枢神经系统肿瘤，约占中枢神经系统恶性肿瘤的78%，占成人中枢神经系统肿瘤的50%，是恶性程度最高也是最具侵袭性的肿瘤之一[1，2]。目前脑胶质瘤治疗主要以最大限度切除实体肿瘤，术后辅以替莫唑胺化疗。化疗是目前治疗胶质瘤及改善预后的重要手段，但目前的治疗效果仍达不到满意，其中主要原因是肿瘤细胞的耐药性[3]。CD133是肿瘤干细胞和神经干细胞的特异性标志物，相关研究显示CD133+细胞具有较强的致瘤能力，CD133+细胞的多药耐药性明显增强[4]。而MRP-1、MDR1在异质性胶质瘤的脑肿瘤干细胞中的高表达是临床内在性耐药和个体耐药的主要原因之一[5]。而GST-π作为肿瘤转化的标志物之一，能够催化谷胱甘肽与亲电性的抗癌药物结合，通过活性将抗癌药物排出细胞，增强肿瘤的耐药性[6]。本研究初步分析MRP-1、MDR1及GST-π在CD133+肿瘤干细胞中的表达，为进一步研究确切的耐药机制及逆转耐药提供前期基础。 　　1 材料与方法 　　1.1材料与试剂 　　U251细胞系（广州赛业生物科技公司，货号：HCGUI-30001），DMEM/F12培养基、胎牛血清（FBS）购自Hyclone公司，胰蛋白酶（Gibco公司）、免疫磁珠（CD133+）细胞分选试剂盒、免疫磁珠分选仪购自Miltenyi Biotec公司，CO2恒温培养箱、-80℃超低温冰箱。 　　1.2 U251细胞复苏及培养 　　将保存人脑 U251 细胞的冻存管从-80℃冰箱中取出，立即置于37℃恒温水浴中，轻轻摇动冻存管使管内冻存液快速融化；将含U251细胞的冻存液移入15 mL无菌离心管中，加入约 5 mL含血清培养基，1000 r/min 离心5 min，弃掉上清液；加入约 3 mL含血清培养基重悬细胞，无菌透气培养瓶中，置于37℃、体积分数 5% CO2饱和湿度的培养箱中培养；观察细胞的生长情况，每3日更换一次培?B液；将U251细胞在含10%的胎牛血清、青霉素 100 U/mL和链霉素100 μg/mL的DMEM 完全培养基中进行单层培养，置于37℃、5% CO2饱和湿度培养箱中连续培养传代。隔日换液1次，每次添加 4 mL培养基，每隔3 d进行细胞传代。 　　1.3 CD133+胶质瘤干细胞分选 　　收集培养基中连续培养的球样U251细胞，胰酶消化、离心后制备单细胞悬液，200 μm滤网过滤并计数。参照免疫磁珠（CD133+）细胞分选试剂盒、免疫磁珠分选仪操作说明进行。 　　1.4 CD133+胶质瘤干细胞培养及鉴定 　　将对数生长期的U251细胞用0.25%胰蛋白酶消化、离心后吹打成单细胞悬液，分别用无菌PBS液和DMEM/F12重悬细胞漂洗1遍，接种到含有EGF （20 ng/mL）、bFGF（20 ng/mL）、LIF（10 ng/mL）、B27（1×）的 DMEM/F12无血清培养基，置于37℃、5% CO2、饱和湿度培养箱中培养。细胞鉴定：取胶质瘤干细胞植入包被有多聚赖氨酸的玻片上，晾干，用PBS冲洗除去残留培养基；经4%多聚甲醛固定，5%山羊血清封闭；分别加入Nestin、β-tubulin 和 GFAP一抗，4℃过夜，加入FITC标记二抗，荧光显微镜镜检。 　　1.5 RT-PCR检测MRP-1、MDR1、GST-π mRNA的表达分析 　　采用Primer Premier v5软件设计MRP-1、MDR1、GST-π引物序列。MRP1 正义链：5-GCAGGGCTACTTCTACACCG-3，反义链：5-TCATCGCCATCACAGCATTG-3；MDR1：正义链：5-CCCATCATTGCAATAGCAGG-3，反义链：5-GTTCAAACTTCTGCTCCTGA-3；GST-π：正义链：5-CCAATACCA