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NS398对肝细胞癌VEGF、MMP9表达调节
NS398对肝细胞癌VEGF、MMP9表达调节
【摘要】 目的 探讨NS398对肝细胞癌血管生成和侵袭的调节作用。方法 NS398取0、25、50、75、100μmol/L 5个浓度组,每个浓度组选取24h、48h、72h三个作用时间点进行检测。采用RTPCR和流式细胞技术,观察NS398对人肝癌SMMC7721细胞株VEGF、MMP9表达的影响。结果 NS398对SMMC7721细胞有明显的生长抑制作用。与对照组相比,NS398能显著抑制SMMC7721细胞COX2、VEGF、MMP9基因和蛋白表达,并呈显著的剂量和时间依赖性关系(Plt;0.001)。结论 NS398能显著抑制SMMC7721肝细胞癌中VEGF、MMP9 mRNA和蛋白的表达。
【关键词】 肝细胞癌 NS398 血管内皮生长因子 MMP9
0 引言
环氧合酶2(Cyclooxygenase2,COX2)不但与肿瘤血管生成有关[1],还可通过改变肿瘤细胞的侵袭性和粘附性来抑制肿瘤生长[2]。我们以前实验表明肝细胞癌组织中COX2与VEGF、MMP9蛋白表达和肿瘤微血管密度(Microvessel density,MVD)之间呈正相关[3],本实验研究COX2特异性抑制剂——NS398对肝癌SMMC7721细胞株VEGF、MMP9表达的影响,初步探讨NS398对肝细胞癌血管生成和侵袭的作用。
1 材料与方法
1.1 细胞培养和药物干预方案
SMMC7721细胞分别用含10%胎牛血清的RPMI 1640培养液在含5% CO2 37℃培养箱中培养。培养液中分别含有青霉素、链霉素100U/ml。将对数生长期的细胞接种于96孔培养板,待细胞贴壁后加入NS398。NS398取0、25、50、75、100μmol/L 5个浓度组,每个浓度组选取24h、48h、72h三个时间点。每个实验组重复6孔。
1.2 主要试剂
NS398购自sigma公司。一抗山羊抗人COX2多克隆抗体,鼠抗人VEGF单克隆抗体,兔抗人MMP9单克隆抗体均为Santa Cruz产品, Trizol试剂(美国Gibco BRL公司)。PCR仪(美国PE公司PE9600型),流式细胞仪(美国BC公司EpicsXLⅡ型)。
1.3 RTPCR检测COX2、VEGF、MMP9 mRNA的表达
按照Trizol试剂说明书逐步提取细胞总mRNA。COX2反应条件为: 94℃变性30s;63℃复性30s;72℃延伸30s。VEGF反应条件为: 94℃变性30s;63℃复性30s;72℃延伸30s。MMP9反应条件为: 94℃变性30s; 63℃复性30s; 72℃延伸30s。进行35个循环后进一步延伸72℃ 5min。COX2引物序列: 上游为5AAT GAG TAC CGA AAA TTC3’,下游为5CAT CTA GTC CGG AGC GGG AAG3’,扩增片段大小为420bp。VEGF引物序列: 上游为5TTG CCT TGC TGC TCT ACC TC 3’,下游为5AAA TGC TTT CTC CGC TCT GA 3’,扩增片段大小为418 bp。MMP9引物序列:上游:5TTG CCT TGC TGC TCT ACC TC3’,下游:5AAA TGC TTT CTC CGC TCT GA 3’,扩增片段大小为120bp。所有引物均由上海生工公司合成,选取βactin为内参照,取10μl PCR产物用1.2%的普通琼脂糖凝胶电泳后,凝胶电泳成像系统观测成像情况。
1.4 流式细胞仪定量检测COX2、VEGF、MMP9的表达
采用间接免疫荧光标记方法。每份样品加入第一和第二抗体工作液各100μl。设有PBS代替一抗和二抗的阴性对照,只加一抗和二抗的阳性对照。以荧光指数(FI)表示相对含量,FI=(样品蛋白表达荧光强度正常样品的荧光强度)/正常样品的荧光强度。
1.5 MTT法检测细胞增殖抑制情况
在96孔培养板中分别加入25、50、75、100μmol/L NS398,继续孵育24、48、72h后每孔加入MTT溶液(5mg/ml)20μl,37℃继续孵育4~5h,吸弃孔内培养上清液。每孔加入150μl DMSO,振荡10min。用酶联免疫检测仪测定490nm处吸光度(A)。每组取3次实验平均值,计算细胞抑瘤率:抑瘤率=(对照组A-实验组A)/(对照组A-空白组A)×100%。
1.6 统计学检验
应用SPSS 10.0统计软件进行统计学分析,组间显著性检验采用析因设计方差分析,Pl
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