流式细胞仪荧光补偿——1概要1.docxVIP

流式细胞仪荧光补偿(一)“荧光补偿”指修正荧光渗漏的过程,如从探测器除去除匹配荧光以外的任何荧光信号。要用到线性代数来计算，要求了解它的产生原理。图1显示在设置荧光补偿中常犯错误。大部分的流式用户不能正确回答图1中的三个问题。对于问题1的正确答案是“样本2”。对于问题2，答案中十字门虚线的位置就不正确。最后，第三个问题的正确答案是：“不可能决定哪个图形中的荧光补偿是正确的”，因此其中没有哪个可以说中正确的。绝大多数类型的数据分析并不绝对需要正确的荧光补偿。此问题的另一个答案是不正确的荧光补偿在双色或三色分析中显得并不十分重要。然而随着五色分在大多数实验室中开展，如果这些个问题持续下去将会导致实验失败。图1中还显示了荧光补偿在正确检测抗原荧光表达强度中重要影响。荧光补偿不足会导致弱阳性群体是假阳性颗粒增多，而过度补偿则会丢失弱阳性群体而导致假阴性。自单激光双色分析出现后此过程变得十分重要。每种荧光素分子都具有自身的光谱发射范围。这些发射光谱之间存在相互叠加，如何才能计数多少信号是来自PE而又有多少信号是由FITC引起的呢？这个计算过程我们称为“荧光补偿”。一步法荧光补偿如果一种荧光染料的发射光可以被两个含有不同波段的滤光片的探测器检测到（如，在发射光谱的不同区域检测），那么就能根据其中一个探测器的信号计算出另一个探测中有多少信号。这是因为这两个信号是成比例变化的（如图3）。这个恒定特性是指我们能够根据绿色荧光探测器中的曲线面积（绿色荧光信号）来精确推算出橙色荧光探测器的曲线面积（如：橙色荧光信号）。这两个值的比值可在没有FITC以外荧光的情况下计算得知。用于此目的的样本被称为“荧光补偿调节样本”或是荧光补偿质控物，用于精确测定补偿值。对于典型的流式细胞仪来说，FITC发射光在橙色探测器中的信号大概是绿色探测器的15%。因此，如果我们从橙色探测器中减少绿色探测器信号的15%，那无论有多少FITC信号存在，经校准后的橙色荧光探测器信号将总为零。这时可在系统中加入PE荧光，橙色荧光探测器经扣除了15%的绿色信号后将显示真正的PE荧光信号，而不用再考虑是否存在FTIC荧光了。这就是“一步法”荧光补偿：在第二探测器中修正来自另一荧光的信号。二步法（双）荧光补偿从图3的荧光谱中可见PE荧光也有部分渗漏至FITC探测器中。通过检测只染有PE荧光的细胞来获知此比例，一般它的数值是2%左右。这称之为PE荧光补偿校正物。但如果PE荧光出现在FITC探测器中，而同时我们又使用FITC荧光来修正PE探测器中的荧光信号，那这还能有可能来正确修正荧光渗漏来得真正的荧光信号吗？一个不完整的答案来解释此问题：在现有n色荧光分析实验，n是指在仪器上同时检测不确定的荧光数量；这个系统的荧光补偿功能可以完全解决此问题。实际上，根据一些数学运算是有可能使用这种方法来精确调节补偿的（读者可以跳过下一章节，而不必研究其中原理）。xFn定义为在n探测器中检测到的来自x荧光的信号。这样fF1就是指FITC探测器中绿色荧光的信号；pF2是指橙色荧光探测器是PE荧光的信号。Dn是指探测n所检测到的荧光信号。在此情况下，假设没有任可背景荧光信号；背景荧光信号将稍后讨论。于是：公式1图2图2 ( 左侧) 一个补偿调节不正确的数据仍能被分析。这些图谱数据是外周血经CD3FITC和CD4PE或PE同型对照染色检测的结果。顶端的图显示的是未经补偿调节的数据；列图中显示了FITC到PE中的补偿依次增加后的结果。十字虚线是依据未染色样本（或是经两种荧光的同型对照染色）设定的来定义阳性细胞群体。实线门是依据单荧光-同型对照染色设定的。注意在任何一张图中，不用考虑补偿是否正确，都可正确计算CD3阳性细胞中表达CD4（CD3+CD4+）细胞的数据，但必须是基于单荧光-同型对照染色对照上的（左侧）。完全以同型对照来设定的虚线十字门来统计将会导致错误的结果。仅在补偿调节正确的情况下（中间图）才能够在CD3+CD4+细胞中准确计算CD4荧光；补偿不足时CD4荧光过强而当补偿过度时出现了阴性群体。所以抗原浓度的检测对不恰当的补偿设定将会特别敏感。图3FITC和PE荧光发射光光谱。发射光（由荧光分受激发后发出的光线）是在488nm光源下激发产生的（氩离子激光器发射光）。FITC发射光的峰值大约在515nm，典型的用于收集它的发射光的滤片是在530nm（深灰色区域）。PE的发射光是远红光线，峰值在575nm左右，检测它的滤片位此峰值中央。注意FITC的发射光有部分延伸至PE信号收集范围（B）；通常落在575nm波段的荧光信号约为530nm波段荧光信号的15%。PE的发射光只有极少部分落在530nm波段中（C），通常它只占575nm波段信号的2%（D）。公式2x荧光在其他探测中的信号将与xFn计算例（n指代专门收