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果胶含量的测定方法二
果胶的测定(方案一):
黄晓钰,刘邻渭等.食品化学综合实验[M].中国农业大学出版社. 2002.158~159
实验原理:果胶经水解,其产物——半乳糖醛酸可在强酸环境中与咔唑试剂产生缩合反应,生成紫红色化合物,其呈色深浅与半乳糖醛酸含量成正比,由此可进行比色定量测定果胶。
实验试剂:1.化学纯无水乙醇或95%乙醇。
2.精制乙醇:取无水乙醇或95%乙醇1000ml,加入锌粉4g,硫酸(1:1)4ml,至于衡温水浴中回流10h,用全玻璃仪器蒸馏,馏出液每1000ml加锌粉和氢氧化钾各4g,并进行蒸馏。
3. 0.15%咔唑乙醇溶液:称取咔唑0.150 g,溶于精制乙醇并定容至100ml。
4.半乳糖醛酸标准溶液:先用水配置成浓度1 g/L的溶液,再配制成浓度分别为(0、10mg/L、20 mg/L、30 mg/L、40 mg/L、50 mg/L、60 mg/L、70mg/L)的系列半乳糖醛酸标准溶液。
5.优级纯浓硫酸。
操作方法:1样品处理:
总果胶提取:(鲜样)研磨新鲜样品50g,放入1000ml烧杯中,加入0.05mol/L HCl 400mL,放置沸水浴中加热1h,加热时应随时补充蒸发损失的水分。冷却后,移入500ml容量瓶,定容摇匀,过滤,滤液待用。(干样)磨细的干燥样品5g,置于250ml三角烧瓶,加入0.05mol/L HCL 150ml,装上冷凝器,与沸水浴中加热回流1h,取出冷却甚至室温,用水定容至200ml,摇匀,过滤,滤液待用。
水溶性果胶提取:新鲜样品应尽量研磨碎,干燥的样品应磨细后过60目筛。样品中存在有果胶酶时,为了顿化酶的活性,可以加入适量热的95%乙醇,是样品溶液的乙醇最终浓度约为70%,然后于沸水浴中沸腾回流15min,使果胶酶钝化,冷却过滤后,以95%乙醇洗涤多次,再用乙醚洗涤,以除去全部糖类、脂类及色素,最后风干除去乙醚。
2果胶提取:水溶性果胶的提取:将样品研碎,新鲜样品标准称取30~50g,干燥样品准确称取5~10g至于250ml烧杯,加入150ml水。加热至沸腾,并保持此状态1h。加热过程随时填补蒸发损失的水分。取出冷却,将杯中物质移入250ml容量瓶,用水洗涤烧杯,洗液并入容量瓶,最终定容至刻度,摇匀过滤,记录滤液体积。
3标准曲线制作:取试管8支,各加入12ml浓硫酸,置冰水浴中冷却后,分别将各种浓度的半乳糖醛酸2ml 徐徐各加入试管中,充分混匀后,再置冰水浴中冷却,然后置沸水浴中加热10min,迅速冷却至室温,各加入1ml 0.15%咔唑试剂,摇匀,与室温下静置30min,用0好使观众的溶液调仪器零点,在530nm波长下测定各管溶液的A530nm值,以A为横坐标,半乳糖醛酸浓度为纵坐标绘制标准曲线。
4测定:取果胶提取液用水稀释至适量浓度(含半乳糖醛酸10~70mg/L)。移取12ml 冰水冷却的浓硫酸加入试管中,然后加入2ml 样品稀释液,充分混合后,至于冰水冷却。取出后在沸水浴中加热10min,冷却至室温,加入1mL 0.15%咔唑试剂,摇匀,于室温下静置30min,用空白试剂调零,在530nm波长下测定A530nm值,与标样对照,求出样品果胶含量。
计算:
可溶性果胶质含量(以半乳糖醛酸计)=
说明:1糖分的存在对本法比色反应较大,使结果偏高,故样品中的糖分应预先出尽。
2硫酸浓度对显色有影响,操作时必须保持硫酸浓度一致。
果胶的测定(方案二):
实验原理
本实验采用钙离子螯合剂和果胶酶提取水果中的总果胶物质,然后用分光光度法测定总果胶物质,先用乙醇处理样品,使果胶沉淀,再用乙醇溶液洗涤沉淀,除去可溶性糖类、脂肪、色素等物质,从残渣中提得果胶物质。采用NaOH溶液将果胶物质皂化,生成果胶酸钠,再经乙酸酸化使之生成果胶酸,再加入果胶酶使之水解。
分光光度法测定是以果胶分子的基本结构单位——半乳糖醛酸和咔唑的反应为基础的。果胶经水解生成半乳糖醛酸,在强酸中与咔唑发生缩合反应,生成紫红色化合物,其呈色强度与半乳糖醛酸含量成正比,测定的结果可用脱水半乳糖醛酸(AUA)。
实验仪器与试剂
仪器:玻璃器皿烧杯、试管、玻棒、胶头滴管、容量瓶、PH计、分光光度计
试剂:①果胶酶提取液:1份果胶酶试剂和10份水在一起搅拌1h,然后离心除去沉淀,上清液即为果胶酶提取液;②1%EDTA溶液(乙二胺四乙酸);③醋酸溶液(1份醋酸+2份水);④浓硫酸;⑤95%乙醇;⑥精制乙醇:在1L 95%乙醇中,加入4g锌粉和4ml硫酸(1+1),在水浴中回流24h,然后蒸馏,
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