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繁穴晨曩搴盒雏=次奢诚■赣擎专鳖羹贯盒2006年会谈论文集
免疫缉化检测鸭乙型肝炎病毒(D鼬V)方法的建立和应用
陈宗艳1.2,程安春1.2·,汪铬书1.2,徐大为1.2,陈孝跃1.
(1.四Jfl农监尢学动物科援学院禽痛防治研究中心四川,雅安,625014;
2神糖痰病与人类健康四川省重点实验室,四川,雅安,625014)
擒要:本研究跌合DHtlV
p诧S区单捷腹水,成劈建立了检洲:DHBsAg的免痰组化检测方法.采集感染
DHISV后12天的肝脏、胰腺、肾脏、脾脏及大脑等组织,分别进行D瑚姒g免疫纽化定位研究.将所建立的
免疫组化庄甩于检潮拉拳夫定治.疗翻曝晔感染鸭后DI髓I戳堍的分布,以评价拉米夫定治疗DHBV的效果.结
果表嚼,Ⅸ嘲列喙主羹氧遗于肝鳙脸胞策内,多呈弥漫性分布;在胰腺、肾脏、脾脏及大脑中也检测到阳
性细胞分布;拉束戈定治疗纽治疗的第5天,第lO天其阳性信号明显减弱,停药第3天阳性信号增强.本方
法岭建立在亚细胞水平舞花了对病毒表达抗原的定位观察,为阐明嗜肝DNA病毒的复制过程、致病机理及
抗病毒治疗等提供了可靠俄据,为鸭乙型肝炎动物模型的进一步研究提供参考资料.
关糊:鸭乙曩肝炎病毒,免疫组化,定位研究,拉米夫定
·程安豢和汪铭书势通讯作者
B
鸭乙型肝炎病毒(I兔ckhep喇s
Bvirus,HBV)同属嗜肝病毒科。DHBV的毒粒形态、
代袭种,与人乙型脬炎瘸毒(kp鲥j|is
基因组大小、复制方式和相对嗜肝性等与HBV一样【ll,与HBV感染人一样,DHBV感染
鸭后可弓f起急、慢性肝炎,肝硬化等。因而DHBV感染鸭可作为研究HBV的良好动物模型
BJ。本实验以DI-啦V
P抛s区单克隆抗体,成功建立了检测DHBsAg的免疫组化检测方法,
在亚细胞水平对DHBV表达的脚融~g抗进行定位检测,以期更加直观的了解DHBV在组
织不同t部位的复制水平,为鹇哽DHBV的致癍机理、抗乙肝药物新药的筛选和药效评价等
提供有力的实验检测手段。
l材料和方法
1.1材料
1.1.1鸭乙型肝炎瘸毒株
四川省重点实验窒提供,-70C保存。
1.1■实赣饕蕾
1日龄天府肉鸭健雏,体重50士59(四川农业大学原种水禽养殖场)。于出孵当日分别经
颈外静脉抽血,用光生物素标记的ormvDNA探针经斑点杂交和液相PCR检测f31筛选出阴
性鸭作为实验动物。
1.1.3抗体篪试裁
抗DHBV
PIeS区单抗由四川农业大学动物疫病与人类健康四川省重点实验室提供:超
司;拉米夫定,葛兰素史克制药(苏州)有限公司,lOOmrJ片,批号
1.1.4试验仪善
Allegratm 35型一次性切片刀片
ZIP型高速冷冻离心机(Bckman公司);FEATHER
JEPAN公司1。
(STAINLESS
1.2方法
1.2.1免疫组化检测1DI琢V方法的建立
1.2.1.1载(盖)玻片准备
参照文献【7,8】进行,进行适当改良。清洁的玻璃载玻片浸酸48小时,流动清水洗24
小时,蒸馏水冲洗2次,载玻片浸入1%的APES,浸泡10s,丙酮洗涤,蒸馏水洗一次,备
..483..
禽类传染病
用,经过这一处理的载玻片在多次洗涤中不会掉片。盖玻片用重铬酸钾浸泡2小时,洗净,
95%酒精浸泡后烘干备用。
1.2.1.2免疫组化程序
参照文献[8】进行,将蜡块切成41xm厚,室温下按常规方法脱蜡,逐级水化至水,将切
min,室温下
片上的组织周围的水用吸水纸擦干,滴加内源性过氧化物酶阻断剂,孵育10
0.0IM
PBS(PH7.4)洗5min×3,采用微波修复抗原10mira室温下0.01MPBS(PH7.4)洗
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