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文 /张 寿 陈 波 金旭红 刘亦恒 王琮仁 范忠诚 (中南大学湘雅海口医院骨科 中心,海南 海 口 570205) 摘 要 :本文探讨BMSCs与同种异体肋软骨细胞共 之一。本试验将骨髓间充质干细胞与肋软骨细胞共培养 培养及复合 自体 “双相”骨基质 明胶 (BMG)修复关节 作为种子细胞,与 自体BMG复合修复兔膝关节软骨缺 软骨缺损的可行性。①获取两种细胞的P2代随机分为三 损,并对其修复效果进行评价。 组 :共培养组、高浓度软骨细胞组,低浓度软骨细胞组, 1 材料与方法 体外培 养2周后检测各组GAG含量。②改 良的Urist法 制备 自体 “双相”BMG支架,并与共培养细胞体外培养 1.1材料 5天。⑤制备 56只兔膝关节软骨缺损模型,随机分为5 新西兰家兔 36只,普通级,体重 1.4~ 1.5kg, 组。实验组植入共培养细胞 -BMG复合体 ,对照组植入 购于长沙市天勤生物技术有 限公司。DMEM培养基 单纯BMG支架,空白组不作特殊处理。术后 1、2、5个 (Gibco),南美洲胎牛血清 (FBS)(海克隆),CO,细胞 月取材行大体 、组织学观察和改良的Pineda法评分。结果 : 培养箱 (Thermo),胶原酶 (Sigma),1,9一二 甲基亚甲 ① 2周后 A组培养液的GAG含量 明显多于B、c组,差 蓝试剂盒 (Sotarbio),倒置相差显微镜 (OlympusIX71), 异有统计学意义 (尸0.o5)。② 电镜示 “双相”BMG呈 扫描电子显微镜 (13本电子公司),二抗免疫组化试剂盒 多孔 网络状结构,细胞黏 附其表面,生长 良好。③术后 (Solarbio),l1型胶原单克隆抗体 (博奥森)。 j个 月实验组软骨缺损 由透明软骨修 复,对照组和 空白 1.2方法 组仅由部分纤维组织填充。实验组各时期的评分优于对 1.2.1BMSCs与肋软细胞的分离、培养 照组和空白组,差异均有统计学意义 (尸0.05)。结论 : (1)取 2~3个月的新西兰家兔,抽取骨髓 2~4ml, ①BMSCs与同种异体肋软骨细胞共培养,可被诱导分化 贴壁离心法获取BMSCs,15%FBS的H-DMEM培养 为软骨细胞,减少 了软骨细胞 的用量 ;②共培养细胞与 液重悬细胞后接种于培养瓶中于含 5%CO,,37℃的培养 自体 “双相”BMG复合可有效地修复关节软骨缺损 。 箱中孵育。细胞融合铺满瓶底 80%~90%,以1:2的 关键词 :软骨缺损 ;组织工程 ;BMSCs;软骨细胞 ; 比例传代。取第二代BMSCs备用。 共培 养 (2)采用酶消化法先后用 0.25%胰蛋白酶和 0.2%II D01:10.5772/J.issn.1OO9—5659.2O15.16.020 型胶原酶消化肋软骨,然后洗涤,离心,10%FBS的 H-DMEM重悬细胞后接种于含 5%CO,37~C的培养箱 由于关节软骨无血管、神经及淋巴管,其营养主要 中孵育。传代方法同上。取P2肋软骨细胞备用。 来 自关节液,因此一旦损伤,很难 以自我修复…。近年 1.2.2BMSCs和软骨细胞混合共培养 来,新兴的软骨组织工程为软骨缺损的修复提供了新的 取第二代BMSCs和肋软骨细胞,浓度调整为3X 策略。选择安全、可靠、有效的种子细胞是其关键步骤 10/ml,随机分为三组:BMSCs与软骨细胞体积比为2:1, 骨组织特异微环境对BMSCs向软骨的定向分化起着重 软骨及软骨下骨结合更好。这可能是新生组织需要在局 要的促进作用 15]。Murphy JM等 将 自体间充质干细 部机械应力的作用下发生改建和重朔 I121,如术后让实验 胞植入半月板和前交叉韧带已全部切除的术山羊关节 动物膝关节 自由活动。另外单纯BMG支
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