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实验动物学操作规程

###一、实验动物学操作规程概述

实验动物学操作规程是保障实验动物福利、确保实验数据准确性和可重复性的重要文件。本规程旨在规范实验动物的操作流程，减少动物应激，提高实验效率，并符合国际动物实验伦理和科学标准。本规程适用于所有涉及实验动物的科研、教学、检测等机构。

###二、实验动物设施与环境要求

####（一）设施要求

1.**笼具设备**

-笼具材质应符合无毒、易清洁、耐腐蚀的要求。

-笼具尺寸应满足动物生理和行为需求，例如：大鼠笼底面积不应小于200平方厘米。

-笼具应配备通风系统，确保空气质量符合标准（氨气浓度14mg/m3，二氧化碳浓度0.5%）。

2.**环境控制**

-温度：维持在20±2℃，湿度：维持在50±10%。

-光照周期：模拟自然光照，每日光照12小时，黑暗12小时。

####（二）卫生管理

1.**日常清洁**

-每日清理粪便和残留物，每周全面消毒笼具和环境。

-消毒剂应选用高效、低毒的消毒液，如0.1%次氯酸钠溶液。

2.**人员管理**

-进入实验区域前需更换清洁服、鞋套，并洗手消毒。

###三、实验动物操作流程

####（一）动物运输

1.**运输前准备**

-检查运输工具的温湿度控制设备是否正常。

-每个运输箱内应放置足够的水和食物。

2.**运输过程**

-避免剧烈摇晃和挤压，运输时间不宜超过4小时。

-运输途中应定时检查动物状态，如有异常立即停止运输。

####（二）动物保定与麻醉

1.**保定方法**

-小型动物（如小鼠、大鼠）可用专用保定笼或徒手保定。

-大型动物（如兔、豚鼠）需使用保定架或保定带，避免过度压迫。

2.**麻醉操作**

-常用麻醉药物：异氟烷、戊巴比妥钠等。

-麻醉剂量应根据动物体重和品种调整（例如：异氟烷浓度0.5%-1.5%，戊巴比妥钠剂量30-50mg/kg）。

-麻醉过程中应监测呼吸和心率，必要时给予辅助通气。

####（三）实验操作

1.**采样操作**

-血液采集：常用尾静脉或心脏采血，采血量不超过体重的5%。

-组织采集：需提前备好无菌器械和保存液，快速操作。

2.**注射操作**

-肌肉注射：选择合适针头，深度为针体长度的1/2-2/3。

-静脉注射：选择血管清晰部位，避免反复穿刺。

###四、实验动物福利保障

####（一）减少应激

1.**操作轻柔**

-动作应缓慢、稳定，避免突然动作导致动物受惊。

-操作前后给予安抚，如轻声呼唤或轻拍。

2.**环境适应**

-新引入动物需适应环境至少一周，期间减少人员干扰。

####（二）疼痛管理

1.**药物镇痛**

-长时间手术或创伤性实验需给予镇痛药物，如非甾体抗炎药（NSAIDs）。

-镇痛剂量应根据疼痛程度调整，每日不超过最大耐受剂量。

2.**非药物镇痛**

-提供舒适的休息环境，如柔软垫料、遮蔽处。

###五、实验动物尸体处理

1.**安乐死方法**

-常用方法：过量麻醉、二氧化碳窒息、过量麻醉剂注射等。

-选择方法时应考虑动物种类和实验需求，确保快速、无痛。

2.**尸体处置**

-实验结束后，尸体应进行无害化处理，如焚烧或深埋。

-处置过程需符合环保要求，避免污染环境。

###六、记录与报告

1.**实验记录**

-每次操作需详细记录动物编号、品种、体重、操作时间、药物剂量、动物反应等信息。

-记录应清晰、完整，便于后续查阅和分析。

2.**报告撰写**

-实验结束后需撰写总结报告，包括实验目的、方法、结果、讨论等内容。

-报告应客观、准确，避免主观臆断。

###一、实验动物学操作规程概述

实验动物学操作规程是保障实验动物福利、确保实验数据准确性和可重复性的重要文件。本规程旨在规范实验动物的操作流程，减少动物应激，提高实验效率，并符合国际动物实验伦理和科学标准。本规程适用于所有涉及实验动物的科研、教学、检测等机构。

本规程的制定基于科学、人道、伦理的原则，强调对实验动物的尊重和关怀。通过规范化的操作，旨在最大限度地减少实验动物在实验过程中的痛苦和不适，同时确保实验结果的可靠性和有效性。本规程涵盖实验动物设施的建造与维护、动物采购与运输、饲养管理、操作技术、动物福利保障以及尸体处理等各个方面，是所有从事实验动物相关工作的单位和个人必须遵守的行为准则。

###二、实验动物设施与环境要求

####（一）设施要求

1.**笼具设备**

-笼具材质应符合无毒、易清洁、耐腐蚀的要求。优先选用食品级不锈钢、改性塑料或玻璃纤维增强塑料等材料。不锈钢笼具耐腐蚀、易消毒，但需注意边缘处理，避免损伤动物；塑料笼具轻便、易清洗，但需注意防紫外线老化；玻璃纤维增