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病理学标本采集要点
CATALOGUE
目录
01
采集前准备
02
标本采集技术
03
标本处理规范
04
生物安全措施
05
质量控制要点
06
文档管理规范
01
采集前准备
患者身份确认与同意
双人核对制度
需由两名医护人员通过患者姓名、住院号或身份证号等唯一标识进行交叉验证,确保标本与患者信息完全匹配,避免样本混淆或错误采集。
知情同意书签署
向患者或家属详细解释采集目的、方法及潜在风险,获得书面同意后方可操作,特殊标本(如组织活检)需额外说明临床意义。
病史与禁忌症筛查
评估患者凝血功能、过敏史及当前用药情况(如抗凝剂使用),排除可能影响采集安全或标本质量的禁忌因素。
设备材料准备清单
专用采集容器选择
根据检测项目选用抗凝管(如EDTA管)、无菌容器或真空采血管,确保材质符合实验室标准且无污染。
区域分级管理
使用含氯消毒剂或75%乙醇对台面、器械托盘及高频接触部位进行双重擦拭,作用时间不低于规定时长。
表面消毒流程
空气质量控制
紫外线循环风消毒每日定时启动,动态空气消毒机需在操作期间持续运行,确保空气菌落数达标。
划分清洁区、半污染区与污染区,标本采集应在独立操作台或生物安全柜内进行,避免交叉感染。
操作环境消毒规范
02
标本采集技术
严格手卫生与防护装备
消毒范围与顺序控制
操作前需规范执行七步洗手法并穿戴无菌手套、口罩及隔离衣,避免人为污染标本或交叉感染。
以穿刺点或切口为中心,由内向外螺旋式消毒,直径不小于5cm,碘伏或酒精类消毒剂需作用足够时间。
无菌操作基本原则
器械与容器无菌管理
使用一次性无菌采集器具,真空管或培养瓶密封性需完好,开盖后应立即使用且避免触碰内壁。
环境与流程隔离
在生物安全柜或清洁区域操作,避免人员走动或空气流动导致的微生物污染。
采样方法选择依据
根据病变性质(如化脓性/坏死性)选择穿刺抽吸、刷检或切除活检,实体肿瘤优先采用粗针穿刺获取组织条。
病灶特性匹配原则
凝血功能异常者慎用创伤性采样,采用细针抽吸替代切开活检;体弱患者控制单次采集量。
患者状态评估
微生物培养需采集病灶深部组织或脓液,分子检测要求新鲜组织快速冷冻,避免RNA降解。
检测项目需求适配
01
03
02
纵隔等高风险区域需影像引导,避免血管神经损伤;皮肤标本应包含病变边缘正常组织对照。
解剖位置安全性
04
主标签粘贴于容器,副标签缠绕固定管盖,蜡块标本需嵌入金属标识码,液氮冻存管激光刻蚀编号。
多重标识防脱落
注明具体解剖部位(如右肺上叶)、采样方式(FNA/切除)、固定液类型及采集精确时间。
关键信息完整性
01
02
03
04
采集者与患者或家属共同确认姓名、ID号及标本类型,电子系统生成唯一追溯条码。
双人核对信息制度
使用PDA扫描上传至LIS系统,记录交接人员工号及状态,冷链运输需附加温控曲线记录。
交接记录电子化
标本标识标准流程
03
标本处理规范
根据组织类型选择适宜的固定液(如10%中性缓冲福尔马林),确保渗透性均匀,避免固定不足或过度导致组织变形或抗原丢失。固定液体积应为标本体积的10倍以上,以保证充分渗透。
即时固定与保存要求
固定液选择与浓度控制
组织标本需在离体后立即固定,室温环境下固定时间通常为6-48小时,大标本需剖开或切片后固定以加速渗透。特殊标本(如脂肪组织)需延长固定时间或调整固定方法。
固定时间与温度管理
对微小标本(如穿刺活检组织)需单独标记并采用滤纸包裹固定,防止丢失;冰冻切片标本需快速置于低温环境保存,避免反复冻融影响组织结构完整性。
特殊标本处理要求
无菌操作规范
采集过程中需严格遵循无菌原则,使用一次性无菌器械和容器,避免交叉污染。接触标本前需佩戴手套、口罩等防护装备,操作台面定期消毒。
生物安全防护
高风险标本(如感染性组织)需标注生物危害标识,单独存放并采用双层密封包装。操作人员需接种相关疫苗,并配备应急处理设备(如消毒剂、锐器盒)。
环境与设备清洁
标本处理区域应划分清洁区与污染区,定期进行空气消毒。离心机、切片机等设备使用后需彻底清洁,避免残留组织碎片影响后续检测结果。
污染预防控制措施
防漏与防震设计
每份标本需标注患者信息、采集部位及时间,外包装粘贴醒目标签(如“易碎”“生物危险”)。随附申请单需与标本分开放置,避免污染。
标签与信息完整性
温控与时效性
需低温运输的标本(如分子检测组织)应使用专用冰袋或干冰,维持2-8℃环境。运输时间控制在24小时内,超时需评估标本有效性并记录异常情况。
标本容器需密封无渗漏,内衬吸水材料防止液体外溢。运输箱应具备抗震性能,填充缓冲材料固定标本瓶,避免运输途中碰撞导致容器破裂。
包装运输安全标准
04
生物安全措施
防护服选择与穿戴
需根据标本风险等级选用相应防护服,确保覆盖全身无裸露,穿
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