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演讲人:
日期:
病理科组织病理学规范
CATALOGUE
目录
01
标本接收与处理
02
组织固定
03
脱水与包埋
04
切片与染色
05
显微镜检查
06
质量控制
01
标本接收与处理
唯一标识系统
采用条形码或二维码技术对标本进行唯一标识,确保从接收、处理到诊断全流程可追溯,避免混淆或丢失风险。
双人核对制度
电子化登记流程
标本登记与识别规范
接收时需由两名工作人员同步核对患者信息、标本类型及数量,并记录异常情况(如容器破损、标本量不足等)。
通过病理信息系统(LIS)录入标本详细信息,包括临床病史、送检科室及特殊处理要求,确保数据完整性与实时共享。
初步检查与记录标准
肉眼观察与描述
记录标本大小、形状、颜色、质地及异常特征(如坏死、出血),使用标准化术语(如“结节状”“囊性变”)确保描述一致性。
标本摄影存档
对特殊或疑难标本进行高清拍照并关联电子病历,为后续诊断和教学提供可视化依据。
分装与标记规范
根据检测需求将标本分装至不同容器,标注“优先处理”或“补充固定”等标签,避免交叉污染或处理延误。
操作人员需穿戴防护服、手套、护目镜及口罩,处理高风险标本(如结核组织)时增加N95口罩和面屏防护。
个人防护装备(PPE)
使用10%中性缓冲福尔马林固定标本至少6小时,确保病原体灭活;高风险标本需单独存放并标注生物危害标识。
标本固定与灭活
锐器置于防刺穿容器,污染耗材经高压灭菌后按医疗废物处理,液体废料需中和后排放,符合环保法规要求。
废弃物分类处置
生物安全处理要求
02
组织固定
固定液选择与应用
作为标准固定液,其渗透性强且能有效保存组织形态,适用于大多数常规病理标本,尤其对核染色质和细胞器结构的保存效果显著。
中性缓冲福尔马林
适用于快速固定或特殊染色需求的组织,如糖原染色,但可能导致组织收缩,需根据检测目的调整浓度和浸泡时间。
主要用于电镜样本制备,能超微结构保存,但渗透速度慢,需配合前处理步骤使用。
乙醇类固定液
含苦味酸和乙酸,对结缔组织或胚胎组织的固定效果优异,但需注意其对核酸的破坏作用,不适用于分子病理学检测。
特殊固定液(如Bouin液)
01
02
04
03
醛类固定液(如戊二醛)
固定时间控制原则
1
2
3
4
厚度相关性
组织块厚度需控制在合理范围内(通常不超过5mm),过厚会导致固定液渗透不足,中心区域出现自溶或假阴性结果。
室温下固定效率最佳,低温会显著延缓固定进程,高温则可能引起组织过度硬化,影响后续切片质量。
温度影响
动态监测
对大型标本或特殊组织(如脂肪、骨组织)需定期评估固定效果,必要时补充固定液或延长固定时间。
二次固定规范
针对特殊检测(如免疫组化),需在初级固定后转入专用固定液,避免抗原表位被遮蔽或降解。
通过HE染色观察细胞核与胞浆的清晰度,核膜完整、染色质分布均匀为优质固定标志,模糊或空泡化提示固定不良。
染色对比分析
采用PCR或WesternBlot验证核酸/蛋白完整性,固定过度可能导致DNA断裂或蛋白交联,影响下游分子病理结果。
分子完整性检测
01
02
03
04
合格固定的组织应具备适度硬度,切割时无黏腻感,且切面均匀无软芯,若出现局部软化或变色需重新固定。
物理性状检查
实验室需制定固定合格率指标,定期抽查标本并记录固定参数(如液量比、渗透深度),纳入质量管理体系持续优化。
质控标准建立
固定质量评估方法
03
脱水与包埋
梯度酒精脱水程序
脱水后需使用二甲苯等透明剂置换酒精,使组织呈现透明状态,便于后续石蜡渗透。透明时间过长可能导致组织脆化,需严格监控透明剂的新鲜度和更换频率。
透明剂处理
自动化设备校准
采用全自动脱水机时,需定期校准液体更换周期、温度及搅拌速度,确保程序参数与标准操作手册一致,避免因设备误差导致脱水不均。
组织标本需依次经过不同浓度的酒精(如70%、80%、95%、100%)进行梯度脱水,确保水分被彻底置换,避免组织收缩或硬化。每道酒精浸泡时间需根据组织类型和厚度精确控制,通常为1-2小时。
脱水流程标准化
包埋材料与技术要求
包埋石蜡的熔点需根据实验室环境温度和组织特性选择(通常为56-60℃),低熔点石蜡适用于脂肪或疏松组织,高熔点石蜡则适合致密组织。石蜡纯度需达到医用级,避免杂质影响切片质量。
石蜡选择与熔点匹配
使用金属或塑料模具时,需确保其尺寸统一且边缘无缺损,避免包埋块形态不规则。模具预冷温度应略低于石蜡熔点,以加速石蜡凝固并减少气泡形成。
包埋模具标准化
包埋前需根据切片需求调整组织方向(如肠管纵切面朝下),并在包埋盒上清晰标注病例编号,防止混淆。包埋操作需在恒温台进行,维持石蜡流动性。
组织定向与标识
包埋质量控制要点
石蜡渗透检测
通过切片观察组织内部是否存在未渗透区域(表现为白色云雾状),若发现渗透不
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