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克氏原螯虾两种模式识别受体基因的克隆、重组表达及功能分析

摘要

本研究旨在克隆克氏原螯虾两种模式识别受体（PatternRecognitionReceptors，PRRs）基因，并对其进行重组表达与功能分析。通过构建cDNA文库，利用PCR技术成功克隆到两种PRRs基因。将克隆得到的基因构建到表达载体中，转入大肠杆菌进行重组表达，获得了纯化的重组蛋白。功能分析结果表明，这两种PRRs基因编码的蛋白能够特异性识别多种病原相关分子模式（Pathogen-AssociatedMolecularPatterns，PAMPs），并参与克氏原螯虾的免疫防御反应。本研究为深入了解克氏原螯虾的免疫机制提供了理论依据，也为克氏原螯虾病害防治提供了新的思路和潜在靶点。

关键词

克氏原螯虾；模式识别受体；基因克隆；重组表达；功能分析

一、引言

克氏原螯虾（Procambarusclarkii），又称小龙虾，是一种重要的经济甲壳动物，因其肉质鲜美、营养丰富，在全球范围内具有广泛的消费市场。然而，随着养殖规模的不断扩大，各种病害频繁发生，给克氏原螯虾养殖业带来了巨大的经济损失。模式识别受体是生物体先天性免疫系统的重要组成部分，能够识别病原微生物表面保守的病原相关分子模式，启动免疫应答反应，在宿主防御病原体入侵过程中发挥着关键作用。深入研究克氏原螯虾的模式识别受体基因，有助于揭示其免疫防御机制，为克氏原螯虾病害的防治提供理论基础和技术支持。目前，关于克氏原螯虾模式识别受体基因的研究相对较少，本研究选取两种模式识别受体基因，对其进行克隆、重组表达及功能分析，以期为克氏原螯虾免疫研究和病害防控提供新的线索。

二、材料与方法

（一）实验材料

实验动物：健康的克氏原螯虾，购自本地养殖场，体质量约30-40g，暂养于实验室水族箱中，水温保持在25±1℃，每日投喂商业饲料，暂养一周后用于实验。

主要试剂和仪器：Trizol试剂、逆转录试剂盒、PCR试剂盒、限制性内切酶、DNA连接酶、表达载体pET-28a(+)、大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞、Ni-NTA亲和层析柱、SDS-PAGE电泳试剂等均购自知名生物试剂公司；PCR仪、低温离心机、恒温摇床、电泳仪、蛋白纯化系统等仪器为本实验室常规设备。

（二）基因克隆

总RNA的提取：取克氏原螯虾的肝胰腺组织，按照Trizol试剂说明书提取总RNA。通过琼脂糖凝胶电泳检测RNA的完整性，利用分光光度计测定RNA的浓度和纯度，确保OD260/OD280比值在1.8-2.0之间。

cDNA文库的构建：以提取的总RNA为模板，使用逆转录试剂盒合成第一链cDNA，随后按照试剂盒说明合成双链cDNA，构建cDNA文库。

引物设计与PCR扩增：根据已发表的甲壳动物模式识别受体基因序列，利用生物信息学软件设计针对克氏原螯虾两种模式识别受体基因的特异性引物。以构建的cDNA文库为模板，进行PCR扩增。PCR反应体系为25μL：2×PCRMix12.5μL，上下游引物（10μmol/L）各1μL，cDNA模板1μL，ddH?O9.5μL。反应条件为：94℃预变性5min；94℃变性30s，55℃退火30s，72℃延伸1min，共35个循环；72℃延伸10min。扩增产物经琼脂糖凝胶电泳检测，回收目的条带。

（三）重组表达

表达载体的构建：将回收的目的基因片段和表达载体pET-28a(+)分别用相应的限制性内切酶进行双酶切，酶切产物经琼脂糖凝胶电泳回收后，使用DNA连接酶进行连接反应，构建重组表达载体pET-28a(+)-PRRs。将连接产物转化到大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞中，涂布于含有卡那霉素的LB固体培养基上，37℃培养过夜。挑取单菌落进行PCR鉴定和双酶切鉴定，筛选阳性克隆。

重组蛋白的诱导表达与纯化：将阳性克隆接种于含有卡那霉素的LB液体培养基中，37℃振荡培养至OD600约为0.6-0.8，加入IPTG至终浓度为0.5mmol/L，16℃诱导表达16h。离心收集菌体，超声破碎后，通过Ni-NTA亲和层析柱对重组蛋白进行纯化。纯化后的蛋白经SDS-PAGE电泳检测纯度，并使用BCA法测定蛋白浓度。

（四）功能分析

PAMPs结合实验：选取脂多糖（LPS）、肽聚糖（PGN）、β-葡聚糖（β-Glucan）等常见的病原相关分子模式，分别与纯化的重组蛋白进行孵育，通过ELISA法检测重组蛋白与PAMPs的结合能力，以确定重组蛋白对PAMPs的识别特异性。

免疫活性分析：将