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一、RNA提取
(1)实验材料准备
1.Trizol(全式金,4℃保存)
2.氯仿、异丙醇、无水乙醇(专门用于RNA提取,4℃)
3.75%的乙醇(RPE):75%无水乙醇+25%DEPC水
4.DEPC水:999mL高压过的三蒸水中加入DEPC(焦碳酸二乙酯)原液1mL,摇匀过夜,4℃
保存。
5.无RNA酶的EP管及枪头(天净沙RNase清除剂购于恩硕公司,天净沙RNase清除剂和单
蒸水以1:1000比例泡5min,倒掉后,再以1:1000比例配比,浸泡过夜,倒掉,以1:10000比
例浸泡3-5min,尽量倒净,高压30min,放烘箱烘干。)
6.移液器、振荡器、高速离心机(最好为4℃离心机)、瞬时离心机、封口膜。
(2)实验步骤
组织样品研磨过程取新鲜采集或保存于-80℃或液氮中的组织200mg(黄豆样大小),放入
盛有1/5液氮的研钵中,先用研杵将组织块敲碎(注意不要让组织和液氮溅出),然后开始研
磨,及时补充液氮以防组织暴露于空气中,将组织研磨成无明显颗粒的粉末状后加入液氮,将
组织液氮混合液倒入预冷的EP管中待液氮挥发完组织还未融化时加入1mLTrizol(或在液氮
即将挥发完毕时,用不锈钢小勺将研磨好的组织加入到盛有1mLTrizol的EP管中),震荡混
匀,-80℃保存备用。
注意事项一定研磨充分,不要求研磨成奶粉状,但至少得看不到明显的颗粒,这样Trizol才
能充分和组织接触,快速裂解组织,也能防止组织的降解(Trizol内含RNA酶抑制剂)。研
磨时注意安全,不要使液氮溅出。
1.取800μLTrizol加入到400μL病毒液(血清、奶汁、稀释处理过的仔猪肠内容物和粪便)
中,振荡器震荡15sec,使其充分混匀,室温静置8min,使得核酸蛋白复合物完全分离。
(超离纯化的病毒,可按原液、1:10、1:50、1:100不同浓度稀释按梯度进行抽提。不同的样品
视情况选择稀释度)
2.可选步骤:4℃12000r/min离心5min,取上清。
注意:如果样品中含有较多蛋白、脂肪、多糖或肌肉、植物结节部分等,可离心去除。
离心得到的沉淀中包括细胞外膜、多糖、高分子量DNA,上清中含有RNA。处理脂肪组
织样品时,上层是大量油脂,应除去。取澄清的匀浆溶液进行下一步操作。
3.加入160μL氯仿(Trizol体积1/5倍),剧烈振荡15sec,室温放置5min。
注意:如不能旋涡混匀,可手动颠倒混匀2min代替。
4.4℃12000r/min离心10min,样品会分成三层:黄色的有机相,中间层和上层无色的水相,
RNA主要在水相中,把水相(约750μL)转移到新的离心管中。(此步骤吸取时注意,宁可
上层水相少吸点也不要吸到中间层)
5.加入等体积的异丙醇(-20度预冷的),混匀,-20℃放置10min。
6.4℃12000r/min离心10min,弃上清。离心前RNA沉淀经常是看不见的,离心后在管侧
和管底形成胶状沉淀。
7.加入800μLRPE(75%乙醇+25%DEPC水)洗涤沉淀,将RNA沉淀弹起,漂洗。
注:每使用1mLTrizol至少用1mLRPE对沉淀进行洗涤。
8.4℃12000r/min离心2min,倒出液体,注意不要倒出沉淀,重复两次。空离(12000r/min
离心1min),然后用枪头吸出多余液体。超净台中室温开盖干燥5-10min,使乙醇完全挥发
掉。
9.沉淀用30-50μLDEPC水溶解。分装出10μL,1μL用于RNA检测,7μL用于反转录,其
余-80℃保存。
10.RNA的完整性、纯度、浓度检测
(1)采用NanoDrop公司制造的微量紫外分光光度计,测定RNA样的浓度(OD260)和纯度
(OD260/OD280),纯度要求在1.8-2.0。
(2)琼脂糖凝胶电泳,确定RNA的完整性和污染情况。
注:1、氯仿的作用:一是作为有机溶剂变性蛋白,使其沉淀并通过离心除去,同时也通过变
性作用抑制RNase(核糖核酸酶)活性;二是RNA提取试剂中通常含有苯酚(Trizol主要成
分就是苯酚),苯酚微溶于水,抽提完之后水相里有少量的酚,如果不除去会损伤核酸,需要
通过氯仿把水相里参与的苯酚抽提
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