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蛋白质提取与纯化技术总结--第1页

蛋白质提取与纯化技术总结

蛋白质提取与纯化技术

1.蛋白质(包括酶)的提取

大部分蛋白质都可溶于水、稀盐、稀酸或碱溶液,少数与脂类结合的

蛋白质则溶于乙醇、丙酮、丁等有机溶剂中,因些,可采用不同溶剂

提取分离和纯化蛋白质及酶。

水溶液提取法:稀盐和缓冲系统的水溶液对蛋白质稳定性好、溶解度

大、是提取蛋白质最常用的溶剂,通常用量是原材料体积的1-5倍,

提取时需要均匀的搅拌,以利于蛋白质的溶解。提取的温度要视有效

成份性质而定。一方面,多数蛋白质的溶解度随着温度的升高而增大,

因此,温度高利于溶解,缩短提取时间。但另一方面,温度升高会使

蛋白质变性失活,因此,基于这一点考虑提取蛋白质和酶时一般采用

低温(5度以下)操作。为了避免蛋白质提以过程中的降解,可加入

蛋白水解酶抑制剂(如二异丙基氟磷酸,碘乙酸等)。

下面着重讨论提取液的pH值和盐浓度的选择。

1、pH值

蛋白质,酶是具有等电点的两性电解质,提取液的pH值应选择在偏

离等电点两侧的pH范围内。用稀酸或稀碱提取时,应防止过酸或过

碱而引起蛋白质可解离基团发生变化,从而导致蛋白质构象的不可逆

变化,一般来说,碱性蛋白质用偏酸性的提取液提取,而酸性蛋白质

用偏碱性的提取液。

2、盐浓度

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稀浓度可促进蛋白质的溶解,称为盐溶作用。同时稀盐溶液因盐离子

与蛋白质部分结合,具有保护蛋白质不易变性的优点,因此在提取液

中加入少量NaCl等中性盐,一般以0.15摩尔。升浓度为宜。缓冲液

常采用0.02-0.05M磷酸盐和碳酸盐等渗盐溶液。

有机溶剂提取法:一些和脂质结合比较牢固或分子中非极性侧链较多

的蛋白质和酶,不溶于水、稀盐溶液、稀酸或稀碱中,可用乙醇、丙

酮和丁等有机溶剂,它们具的一定的亲水性,还有较强的亲脂性、是

理想的提脂蛋白的提取液。但必须在低温下操作。丁提取法对提取一

些与脂质结合紧密的蛋白质和酶特别优越,一是因为丁亲脂性强,特

别是溶解磷脂的能力强;二是丁兼具亲水性,在溶解度范围内(度为

10%,40度为6.6%)不会引起酶的变性失活。另外,丁提取法的pH

及温度选择范围较广,也适用于动植物及微生物材料。

2.蛋白质的分离纯化

亲和层析法:

亲和层析的原理与众所周知的抗原一抗体、激素一受体和酶一底物等

特异性反应的机理相类似,每对反应物之间都有一定的亲和力。正如

在酶与底物的反应中,特异的废物(S)才能和一定的酶(E)结合,

产生复合物(E-S)一样。在亲和层析中是特异的配体才能和一定

的生命大分子之间具有亲和力,并产生复合物。而亲和层析与酶一底

物反应不同的是,前者进行反应时,配体(类似底物)是固相存在;

后者进行反应时,底物呈液相存在。实质上亲和层析是把具有识别能

力的配体L(对酶的配体可以是类似底物、抑制剂或辅基等)以共价

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键的方式固化到含有活化基团的基质M(如活化琼脂糖等)上,制成

亲和吸附剂M-L,或者叫做固相载体。而固化后的配体仍保持束缚

特异物质的能力。因此,当把围相载体装人小层析柱(几毫升到几十

毫升床体积)后,让欲分离的样品液通过该柱。这时样品中对配体有

亲和力的物质S就可借助静电引力、范,以

及结构互补效应等作用吸附到固相载体上,而无亲和力或非特异吸附

的物质则被起始缓冲液洗涤出来,并形成了第一个层析峰。然后,恰

当地改变起始缓冲液的PH值、或增加离子强度、或加人抑③剂等因

子,

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