生理因素及药物对呼吸运动及膈神经放电的影响实验报告.docVIP

家兔呼吸运动的调节 实验目的： 用气管插管描记呼吸流量间接反映家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的方法，研究吸入二氧化碳、静脉注射乳酸溶液、增大解剖无效腔以改变血液中二氧化碳浓度、氧气浓度、[]和气道阻力、切断颈部迷走神经、电刺激迷走神经中枢端对呼吸运动的影响并初步探讨其作用部位，并分析机制。 掌握气管插管术和神经血管分离术。 实验材料： 对象：家兔； 试剂：20g/L 乳酸溶液， 氨基甲酸乙酯； 仪器：RM6240生物信号采集系统，手术器械一套，兔手术台，T型气管插管，注射器，50cm长橡皮管一条，CO2气袋，丝线，铁架台，婴儿秤，呼吸换能器，电刺激连线。 实验方法： 1.麻醉固定：家兔称重后，将氨基甲酸乙酯以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入，注意观察家兔的反应。待麻醉后，将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头。 2．手术： 剪去家兔颈部的被毛，沿颈部正中线作一长6～7cm的切口，用止血钳钝性分离皮下组织，暴露并游离气管，并于气管下穿线备用。在气管两侧肌肉深面颈动脉鞘内分离迷走神经，并在其下穿线备用。在甲状软骨下第4～5个气管软骨处作一 “⊥”形切口。将T型气管插管向肺的方向插入气管内，用预留备用线线结扎固定。手术完毕后用纸巾擦拭手术伤口部位。 3．观察准备： 用皮管连接气管插管和呼吸换能器。打开呼吸换能器，启动计算机RM6240生物信号采集系统，点击“实验”菜单，选择“呼吸运动调节”，双击一通道，调节增益、采样参数，使基线归零，令图形位于屏幕中央，便于观察。 4．观察项目 （1）记录正常呼吸曲线作为对照，辨认曲线上呼气、吸气的波形方向。 （2）在气管插管一个侧管上接一根长50cm胶管（流量法：接通气口），观察和记录呼吸运动的变化。 （3）增加吸入气中CO2浓度：待呼吸曲线恢复正常，将装有CO2气袋的皮管口移近气管插管的侧管，打开皮管夹子，使吸入气中含有较多的CO2。记录并观察吸入高浓度的CO2对呼吸运动的影响。关闭气袋，观察呼吸运动的恢复过程。 （4）增加血液中浓度：由耳缘静脉迅速注入20g/L乳酸溶液2mL，记录并观察呼吸运动的变化。 （5）观察迷走神经在调节呼吸运动中的作用：剪断左侧迷走神经，记录并观察呼吸运动的变化。然后剪断右侧迷走神经，记录并观察呼吸运动的变化。 （6）以2V、25Hz，持续10s，波宽2ms的串刺激刺激右侧迷走神经中枢端，记录并观察呼吸运动的变化。 实验结果：1.本组呼吸图（见第一份实验报告） 2.本组实验结果数值统计： 编号 最大呼气峰压 最小吸气谷压 呼气间期 吸气间期 呼吸时比 (cmH2O) (cmH2O) (ms) (ms) (倍) 正常 0.31 -0.59 675 425 1.59 增大无效腔 1.87 -1.82 450 375 1.2 二氧化碳 1.91 -2.13 600 425 1.41 乳酸 0.77 -0.88 625 550 1.14 剪断一侧迷走神经 0.62 -0.72 500 575 0.87 剪断另一侧迷走神经 0.87 -0.92 450 625 0.72 电刺激 -0.01 -0.15 41.25 45 0.92 （由于失误遗漏了在做每次实验前的正常值对比项，而使实验的可信性降低） 3.班级数据统计表 实验项目 最大呼气峰压 最小吸气谷压 呼气间期 吸气间期 呼吸时比 呼吸频率 (cmH2O) (cmH2O) (ms) (ms) (倍) 正常 ±S 1.22 ±0.90** -0.40±0.69** 512.50±150.69* 356.25±77.39** 1.43±0.16** 64.33±10.41 增大无效腔 ±S 2.56 ±0.98** -1.18±0.61* 361.25±207.68 306.25±199.51* 1.26±0.43** 70.00 ±5.57 二氧化碳 ±S 7.32±4.36** -6.95± 5.27** 500.00± 117.26 490.00±166.40** 1.11±0.44** 63.00±4.36 乳酸 ±S 1.83±0.86** -0.74±0.86 * 335.75±254.71 326.00±240.71* 1.12±0.81** 59.50±8.81 切断一侧迷走神经 ±S 2.00± 1.25** -0.66±1.26* 315.50±213.85 345.75±234.75* 0.89±0.31 ** 59.67±3.79 切断另一侧迷走神经 ±S 1.64±1.20** -1.94±2.35 * 355.75± 202.00 526.00±305.27* 0.80±0.40** 53