生理实验精华-肌肉的收缩特征.ppt

吸入CO2增多 两条途径： 颈A体 主A体 化学感受器 窦N 迷走N 延髓 呼吸加深加快 PCO2 脑脊液中 H2CO3 H+ 中枢化学感受器 舌咽N 传出N PCO2 H2O CA HCO3- 延髓 （动脉血） （+） 呼吸中枢 （+） （+） 透过血-脑屏障 外周途径 中枢途径（主要） 动脉血中CO2分压对呼吸的调节 增大解剖无效腔 解剖无效腔增大对呼吸的调节 1、解剖无效腔的概念 指每次吸入的气体，一部分将留在呼吸性细支气管以前的呼吸道内，这部分气体不能与血液进行气体交换，故将这部分呼吸道的容积称为解剖无效腔。 2、既有动脉血中O2减少的作用，又有CO2增多的作用 剪断一侧迷走神经 剪断另一侧迷走神经 吸气 肺扩张 平滑肌牵张感受器（+） 迷走N 吸气中枢 呼气中枢 传出N 吸气肌舒张 呼气（+） 支气管 细支气管 延髓 躯体N 吸气（-） 传入N （N中枢） （效应器） 呼气 肺缩小 （-） 吸气肌收缩 （-） （+） 肺牵张反射对呼吸的调节 注意事项 1、麻醉应适量。 3、插管前做好相应准备。 4、出血时及时止血，手疾眼快。 5、每观察一个项目，必须待呼吸恢复正常后，再进行下一项。 2、切皮后，不能再用锋利或尖的金属器械。 思考题 1、如何判断家兔麻醉成功？ 2、实验过程中发生出血或喷血现象应如何处理？ 3、气管插管时有哪些注意事项？ 离体肠管平滑肌的生理特性 实验原理 收缩性 缓慢而不规则的自动节律性 伸展性 对化学、温度及机械牵拉刺激较为敏感 哺乳动物消化道平滑肌具有以下生理特性： 实验器材与药品 恒温水浴槽、麦氏浴管、吊瓶、W形排气管、氧气瓶、张力换能器、针线、注射器、RM6240多道生理信号采集处理系统 台氏液、 1:10000肾上腺素（Adr）溶液、 1:100000乙酰胆碱（ACh）溶液 实验步骤 （一）离体肠管平滑肌标本的制备 1、木棒击兔头部，使其昏迷 2、剖开腹腔→找胃→找十二指肠→取2~3cm小肠段 3、取一段小肠放入台氏液，冲出内容物 4、在小肠两端备线，悬挂于麦氏浴管中 （二）连接实验装置 1、恒温水浴槽，水温加热到28℃ 2、通氧速度：50~70个气泡/min 小肠两端备线 1、备线时，呈“十字”交叉 2、两线间距离要足够大 3、挂在排气管的线扣直径1cm 4、挂在换能器的线可长些 连接实验装置 液面高度要一致，且没过肠段 连线不能触及浴管及通气管管壁 连线要垂直，且不松不紧 注意事项 观察项目 1、记录肠管在28℃台氏液中的活动情况 2、考察温度的影响，记录肠管由28℃ ~38℃升温过程中的活动变化，每升高2℃ ，记录一段 3、滴加Adr 0.1 ml，记录，冲洗，恢复 4、滴加ACh 0.1 ml，记录，冲洗，恢复 肠管在28℃台氏液中的活动情况 温度变化对肠管活动的影响 典型的肠管收缩曲线（梭形波） 温度对肠管平滑肌运动的影响 肠管平滑肌对温度改变极为敏感 当温度在30℃以下时，由于代谢水平降低，兴奋性减弱 收缩曲线基线下移，频率变慢，收缩幅度变小 随着温度升高，肠管活性逐渐恢复 滴加Adr后 肾上腺素 肠管平滑肌?2受体 肠管平滑肌?2受体 肠管收缩频率变慢、幅度减小、基线下移 肠管活动减弱 滴加ACh后 乙酰胆碱 肠管平滑肌M受体 肠管活动增强 收缩频率变快、幅度增加、基线上移 注意事项 3、浴槽中的液面高度要一致，且没过肠段。 4、各药液量为参考量，不明显可补加。 5、观察到现象后，立即更换台氏液，待肠管恢复正常运动后再观察下一项目。 1、标本与张力换能器的连线不能触及浴管及通气管管壁。 2、标本与张力换能器的连线要垂直，不能过紧、也不能过松。 思考题 1、哺乳动物离体器官实验需要哪些基本条件？ 2、实验仪器安装的注意事项？ 滴加2%氯化钙 结果分析——CaCl2的作用 [Ca2+]o ↑ → Ca2+内流↑ → [Ca2+]i↑ → 兴奋—收缩耦联↑ →收缩力↑ 舒张期Ca2+与肌钙蛋白不完全解离，基线上移，产生Ca2+强直 滴加1%氯化钾 结果分析——KCl的作用 K+与Ca2+在心肌细胞膜上有竞争性抑制作用 [K+]o ↑ Ca2+内流↓ 收缩力↓ 膜内外K+浓度梯度减小 工作细胞静息电位绝对值减少 Na+通道失活 心肌兴奋性完全丧失 停止于舒张状态 注意事项 1、成功插管：勿剪破心脏血管、勿结扎静脉窦。 2、及时抢救： 3、前后对照：每步加药前均应设有药前“对照”。 4、液面相同： 如加入ACh和KCl后，要及时冲洗避免过度抑制而死亡。 每次冲洗后应调整液面相同。 5、量效关系：先加1滴观察效应，不明显再加。 思考题 1、正常人体心脏起搏点位于哪儿？ 2、两栖类动物心脏起搏点位于哪儿？ 3、判断蛙心插管插入心室腔的标准是什么？ 4、如何观