微生物的计数实验报告（精选4篇）.docVIP

微生物的计数实验报告（精选4篇） 以下是网友分享的关于微生物的计数实验报告的资料4篇，希望对您有所帮助，就爱阅读感谢您的支持。 篇一 实验十 微生物的显微计数 一、实验目的 1、明确血细胞计数板计数的原理。 2、掌握使用血细胞计数板进行微生物计数的方法。 二、基本原理 显微镜直接计数法是将小量待测样品的悬浮液（菌悬液）置于一种特别的具有确定面积和容积的载玻片上(又称计菌器) ，在显微镜下通过直接计数，测定菌悬液中微生物细胞或孢子浓度的一种方法。常用的计菌器有：血细胞计数板、Peteroff-Hauser 计菌器以及Hawksley 计菌器等，都可用于酵母、细菌、霉菌孢子等悬液的计数，而且基本原理相同。但后两种计菌器由于盖上盖玻片后，盖玻片和载波片之间的距离只有0.02mm ，因此可用油浸物镜对细菌等较小的细胞进行观察和计数。除用这些计菌器外，还有在显微镜下直接观察涂片面积与视野面积之比的估算法，如此法用于牛乳的细菌学检查。显微镜直接计数法直观、快速、操作简单的优点，但此法存在着测得的结果系死菌体和活菌体的总和的缺点。 本实验以血球计数板进行微生物的显微直接计数，这是显微直接计数采用最普遍的方法。血球计数板是一块特制的载玻片，其上由四条槽构成三个平台；中间较宽的平台又被一短横槽隔成两半，每一边的平台上刻有一个方格网，每个方格网共分为9个大方格，中间的大方格即为计数室。计数室有两种规格：一种是一个大方格分成25个中方格，而每个中方格又分成16个小方格；另一种是一个大方格分成16个中方格，而每个中方格又分成25个小方格，但无论是哪一种规格的计数板，每一个大方格中的小方格都是400个。每一个大方格边长为lmm 、面积为lmm 2，盖上盖玻片后盖玻片与载玻片之间的高度为0.lmm ，所以计数室的容积为0.lmm 3(万分之一毫升) 。 计数 计数时通常数五个中方格的总菌数，然后求得每个中方格的平均值，再乘上25或16，就得出一个大方格中的总菌数，然后再换算成lml 菌液中的总菌数。 计算 设五个中方格中的总菌数为A ，菌液稀释倍数为B ，若25个中方格的计数板，则 菌量（菌数/1mL）=A/5×25×104×B=50000AB （个） 如果是16个中方格的计数板，则 菌量（菌数/1mL）=A/5×16×104×B=32000AB （个） 三、器材 1、菌种 酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae) 2、仪器或其他用具 血球计数板、血球计盖玻片、显微镜、无菌毛细滴管。 四、操作步骤 l 、菌悬液制备 以无菌生理盐水将酿酒酵母制成浓度适当的菌悬液。 2、镜检计数室 在加样前，先对计数板的计数室进行镜检。若有污物，则需清洗，吹干后才能进行计数。 3、加样品 将清洁干燥的血细胞计数板盖上盖玻片，再用无菌的毛细滴管将摇匀的酿酒酵母菌悬液由盖玻片边缘滴一小滴，让菌液沿缝隙靠毛细渗透作用自动进入计数室，一般计数室均能充满菌液。取样时先要摇匀菌液；加样时计数室不可有气泡产生。 4、显微镜计数 加样后静止约5min ，然后将血细胞计数板置于显微镜载物台上，先用低倍镜找到计数室所在位置，然后换成高倍镜进行计数。 调节显微镜光线的强弱适当，对于用反光镜采光的显微镜还要注意光线不要偏向一边，否则视野中不易舌清楚计数室方格线，或只见竖线或只见横线。 在计数前若发现菌液太浓或太稀，需重新调节稀释度后再计数。一般样品稀释度要求每小格内约有5~10个菌体为宜。每个计数室选5个中格(可选4个角和中央的一个中格) 中的菌体进行计数。位于格线上的菌体一般只数上方和右边线上的。如遇酵母出芽，芽体大小达到母细胞的一半时，即作为两个菌体计数。计数一个样品要从两个计数室中计得的平均数值来计算样品的含菌量。 5、清洗血细胞计数板 使用完毕后，将血细胞计数板在水龙头用水冲洗干净，切勿用硬物洗刷，洗完后自行晾干或用吹风机吹干。镜检，观察每小格内是否有残留菌体或其他沉淀物。若不干净，则必须重复洗涤至干净为止。 五、四、注意事项 1、加酵母菌液时，量不应过多，不能产生气泡；2、由于酵母菌菌体无色透明，计数观察时应仔细调节光线；3、血球计数板用后，在水龙头上用水柱冲洗干净，切勿用硬物洗刷或抹擦，以免损坏网格刻度。洗净后自行晾干或吹风机吹干。 六、实验报告 l 、结果 将结果记录于下表中。A 表示五个中方格中的总菌数；B 表示菌液稀释倍数。 2、思考题 1) 根据你的体会，说明用血细胞计数板计数的误差主要来自哪些方面? 应如何尽量减少误 差．力求准确? 2) 试分析以微生物血球计直接计数精确度的影响因素 3）时为什么必须使用干而清净的血球计板 4）某单位要求知道一种干酵母粉中的活菌存活率，请设计1～2种可行的检测方法。 图15—1 血细胞计数板构造（一