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GUS活性检测mod - 中科瑞泰.PDF
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用较为广泛的报告基因是GUS 基因,它来自于大肠杆菌,编码 -葡萄糖醛酸乙酰转
移 酶 。 该 酶 与 5- 溴 -4- 氯 -3- 吲 哚 - -D- 葡 萄 糖 苷 酸 酯
(5-bromo-4-chloro-3-indoyl- -D-glucuronic acid, X-Gluc)底物发生作用,产生蓝色沉淀反
,既可以用分光光度法测定,又可以直接观察到植物组织由沉淀形成的蓝色斑点。检测容
易、迅速并能当量。只需少量的植物组织即可在短时间内测定完成。
1.GUS 酶活性检测
gus 基因 在于某些细菌体内,编码 -葡萄糖苷酸酶 (-glucuronidase,GUS),该
酶是一种水解酶,能催化许多 -葡萄糖苷酯类物质的水解。因为绝大多数植物细胞内不
在内源的GUS 活性,因此gus 基因广泛用作转基因植物的报告基因,尤其是在研究外源基
因瞬时表达的转化实验中广泛 有。此外,gus 基因3’端与其他结构形式的融合基因也能够
正常表达,所产生的融合蛋白仍具有GUS 活性,这对研究外源基因表达的具体细胞部位提
供了方便条件,也是它相对于其他报告基因的一个优点。
主要有以下三种检测方法:
(1)组织化学染色定位法
该法以5-溴-4-氯-3-吲哚- -D 葡萄糖苷酸酯 (X-Gluc)为底物,通过显色反 可直接观
察到组织器官中 gus 基因的活性。该方法不用将酶从组织中提取出来,而是使底物进入被
测的植物组织、细胞或原生质体之中。将被测材料浸泡在含有底物的缓冲液中保 ,若组织、
细胞、原生质体发生了gus 基因转化,表达出 GUS,在适宜条件下该酶可将X-Gluc 水解
生成蓝色物质,初始产物并不带颜色,为无色的吲哚衍生物,后经氧化二聚作用形成 5,5’-
二溴-4,4’-二氯靛蓝染料,此靛蓝染料使具有GUS 活性的部位或位点呈现蓝色,可用肉眼或
在显微镜下观察到。
(2 )荧光法测定GUS 活性
该法以 4- 甲基伞形酮酰- -D-葡萄糖醛酸苷酯 (4-MUG)为底物,GUS 催化其水解为
4- 甲基伞形酮(4-MU)及 -D 葡萄糖醛酸。4-MU 分子中的羟基解离后被365nm 的光激发,
产生455nm 的荧光,可用荧光分光光度计定量。具体测定时有两种做法: 仅在一个时间上
测定溶液的总荧光量,测定时要设对照,以消除内源荧光强度;②测定酶反 不同时间溶液
荧光量 (荧光法十分灵敏,微小的增加量也可以测定出来),在酶反 初始阶段,酶作用生
成的荧光物质在反 体系中处于积累阶段,荧光产物与时间有线性关系,而内源性荧光物质
的荧光量与时间无此种关系,因而可通过测定酶反 初始阶段几个时间的荧光量,得到的线
性关系即可作为酶活力的依据。
(3 )分光光度法测定GUS 活性
对硝基苯 -D-葡萄糖醛酸苷 (PNPGluc)是该法的最好底物,GUS 将其水解,生成对
硝基苯酚,在pH7.15 时离子化的发色团吸收400~420 的光,溶液呈黄色,酶反应在pH7.0
条件下进行,随反 进行,产物生成,逐渐碱化,显色增强。以对硝基苯酚为标准样品,分
别在反 开始后不同时间取样,终止反 后于415nm 测吸收值。这种方法简单,无需复杂
仪器,但其灵敏度不 ,可通过延长反 时间来增强显色。
X-Gluc 母液配制
20 mg/ml (38mM) X-Gluc. e.g. For a 1.5 ml tube (microfuge tube) dissolve 30 mg of X-Gluc in 1.5 ml
DMSO (dimethyl sulfoxide) or DMF(N,N-dimethylformamide),避光-20℃
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