大鼠透明质酸合成酶3基因真核表达载体的构建及趋.docVIP

　　大鼠透明质酸合成酶3基因真核表达载体的构建及趋 【摘要】 目的: 构建透明质酸合成酶3（hyaluronan synthase3）真核表达载体, 转染真核细胞并检测重组蛋白酶活性。方法: 提取损伤大鼠坐骨神经总RNA, RTPCR扩增HAS3编码框cDNA, 构建于真核表达载体pcDNA3.1D中, 并亚克隆到荧光载体pEGFPN1中。将构建好的质粒转染大鼠施旺细胞RSC96, 检测HAS3的表达及酶活性。研究转染细胞培养上清对巨噬细胞的趋化作用。结果: HAS3真核表达载体pcDNA3.1DHAS3及pEGFPHAS3测序结果显示片段插入正确, 序列与GenBank公布数据一致, 转染RSC96细胞并检测到重组蛋白的表达和酶活性, 过表达HAS3细胞的培养上清对巨噬细胞的趋化作用显著高于未转染细胞上清。结论: 成功地构建HAS3真核表达载体且真核表达的重组HAS3具有合成HA活性, HAS3过表达培养上清能趋化巨噬细胞, 在体内可能参与到炎症反应中。 【关键词】 透明质酸合成酶 载体构建 真核表达 趋化 　　透明质酸（hyaluronic acid, HA）是由葡萄糖醛酸及乙酰氨基葡萄糖二糖单位重复排列构成的不典型的氨基聚糖, 广泛的分布于各种结缔组织、 皮肤、 软骨、 滑液中。研究证明HA在体内不仅仅是作为细胞外基质参与到组织的结构组成上, 它还是一个重要的细胞外信号分子, 在细胞迁移、 肿瘤、 创伤修复等方面起重要作用。HA在体内由透明质酸合成酶（HAS）合成。Itano等［1］于1996年从1株突变的小鼠乳腺癌细胞中第1次克隆出哺乳动物HAS, 并被命名为mmHAS1。Spicer等［2］随后从小鼠胚胎中克隆出第2个家族成员mmHAS2。1年后该实验室又成功克隆出HAS家族第3个成员HAS3［3］。目前普遍认为, HAS1与HAS2催化合成大的相对分子质量（Mr）HA（HMr HA（LMEM、 胎牛血清购自 Gibco公司; 质粒回收及DNA纯化试剂盒购自OMEGA公司; DNA合成及测序由英骏广州公司完成。其他化学试剂均为分析纯。 　　1.2 方法 　　1.2.1 大鼠HAS3全长cDNA的克隆及载体构建 根据GenBank公布的大鼠HAS3 mRNA序列, 通过序列中本身含有的KpnⅠ酶切位点将全长ORF分5′端和3′端两段进行扩增, 参照pcDNA3.1D多克隆位点的酶切位点, 共设计两对扩增引物。5′端扩增上游引物为5′GTCAAGCTTCACCATGCCGGTGCAGCTGACTAC3′, 含有Hind Ⅲ酶切位点, 下游引物为5′CTTCTGATGGTACCAGTCCTC3′, 含有KpnⅠ酶切位点。3′端扩增上游引物为5′GGAGGACTGGTACCATCAGAAG3′, 含有KpnⅠ酶切位点, 下游引物为5′GTCCTCGAGACCTCAGCAAAAGCCAGGC3′, 含有XhoⅠ酶切位点。用TRIzol提取CCI大鼠损伤神经总RNA, 逆转录合成cDNA第1链, 用作PCR的模板。首先用3′端片段的引物扩增, Tm=60℃, 共进行35个循环, 切胶回收。用KpnⅠ和XhoⅠ双酶切PCR产物和pcDNA3.1D质粒4 h, 回收酶切产物, 将PCR酶切产物和酶切质粒按照10∶1混合, 16℃连接过夜, 转化TOP10大肠杆菌, 菌落PCR鉴定阳性克隆, 提取重组质粒pcDNA3.1DHAS3f3, 酶切鉴定, 测序。用同样方法扩增HAS3 5′端片段, 插入到pcDNA3.1DHAS3f3质粒中, 构建pcDNA3.1DHAS3重组质粒并鉴定。 　　用Hind Ⅲ和Sac Ⅱ双酶切质粒pEGFPN1, 回收, 同样方法酶切pcDNA3.1DHAS3, 回收1 700 bp左右片段, 将该回收片段与pEGFPN1酶切产物10∶1混合, 16℃连接过夜, 转化TOP10大肠杆菌, 菌落PCR鉴定阳性克隆, 提取重组质粒pEGFPHAS3, 酶切鉴定。 　　1.2.2 HAS3及HAS3GFP融合蛋白的真核表达 RSC96细胞培养于含有100 mL/L胎牛血清的DMEM高糖培养液中, 于37℃、 50 mL/L CO2培养箱中培养。于转染前24 h按照1×108个/L数量接种到24孔板中, 转染前换成无双抗的100 mL/L胎牛血清DMEM培养液。转染方法按照lipofectamine 2000说明书进行。转染6 h后, 换新鲜100 mL/L胎牛血清 DMEM高糖培养液继续培养至48 h。收集细胞, TRIzol提取总RNA和总蛋白, 逆转录合成cDNA第1链, 用作PCR模板。根据HAS3 ORF序列, 设计检测用