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荧光定量PCR实验操作流程
荧光定量PCR 北京康为世纪生物科技有限公司 细胞RNA提取 样品:293T细胞 试剂:超纯RNA提取试剂盒、氯仿、70%乙醇 方法:柱式 原理: 细胞在变性剂异硫氰酸胍的作用下被裂解,核蛋白体上的蛋白变性,核酸释放。 释放出来的DNA和RNA由于在特定pH和盐浓度下溶解度的不同而分别位于整个体系中的中间相和水相,从而得以分离。 细胞悬液离心,倒掉上清,加入1ml RLT; 反复吹打,使样本充分裂解; 室温放置5min,使核酸蛋白复合物完全分离 1. 裂解: 2. 抽提: 加入200ul氯仿,剧烈振荡15s,室温放置2min; 4℃ 12,000 rpm 离心10分钟,此时样品分为三层; 上层无色水相, 中间白色蛋白质相, 下层红色有机相, RNA在上层水相中 细胞RNA提取 3. 过柱子: 吸取上层水相,至新的RNase-Free管中(注:不要吸到中层) 加入等体积70%的乙醇,颠倒混匀; 将溶液全部加入到已装入收集管(CollectionTube 2ml)的吸附柱(SpinColumn RM)中。若一次(700ul)不能加完溶液,可分多次入; 12,000rpm离心20s,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中; 4. 洗涤: 向吸附柱加入700 μl Buffer RW1,12,000rpm离心20s,倒掉收集管中的废液, 将吸附柱重新放回收集管中; 向吸附柱中加入500μlBufferRW2(使用前检查是否已加入无水乙醇), 12,000rpm离心20s,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中; 重复步骤8;12,000rpm离心2min,弃废液,吸附柱置于室温数分钟,以彻底晾干; 细胞RNA提取 5. 洗涤: 将吸附柱置于一个新的无RNase离心管(CollectionTube1.5ml)中向吸附柱的 中间部位加入30-50μlRNase-FreeWater,室温放置1min,12,000rpm离心1min, 收集RNA溶液,进行后续试验或-70℃保存RNA,防止降解。 注意:1)RNase-FreeWate体积不应小于30μl,体积过小影响回收率。 2)若提高RNA的产量,可用30-50 μl新的RNase-FreeWater重复步骤5。 3)若提高RNA浓度,可将得到的溶液重新加入到吸附柱中,重复步骤5。 6. RNA检测: 用ddH2O,对仪器进行调零;取1ul的RNA溶液进行测定; 测定样品纯度和浓度。 纯度:OD260/OD280 = 1.9-2.1 1.8 蛋白质或酚类污染 2.2 RNA水解 浓度:RNA(ug/ml)=40﹡OD260*稀释倍数 细胞RNA提取 逆转录 实验材料:HiFi-MMLV cDNA第一链合成试剂盒,RNA 实验步骤: 1. 将 RNA模板、Primer Mix、dNTP Mix、DTT、RT Buffer、HiFi-MMLV和 RNase- Free Water溶解并置于冰上备用。 2. 根据以下表格配置反应体系,总体积为20 μl。 试剂 20 μl 反应体系 dNTP Mix,2.5 mM Each 4 μl Primer Mix 2 μl RNA Template 2 μl 5×RT Buffer 4 μl DTT,0.1 M 2 μl HiFi-MMLV,200 U/μl 1 μl RNase-Free Water 5 μl 3. 涡旋震荡混匀,短暂离心,使管壁上的溶液收集到管底。 4. 42℃孵育30~50分钟,70℃孵育15分钟。反应结束后,短暂离心,置于冰上冷却。 5. 逆转录产物可直接用于PCR和荧光定量PCR,或置于-20℃长期保存。 逆转录 荧光定量PCR 材料:2×UltraSYBR Green Mixture,cDNA,actin引物 实验步骤: 1. 稀释模板:每稀释一个倍数,需要将溶液混匀,并短暂离心。 编号 模板稀释倍数 水用量 模板用量 1 1倍 0ul 原液 2 10倍 45 μl 5 μl (从1号管取) 3 100倍 45 μl 5 μl(从2号管取) 4 1000倍 45μl 5 μl(从3号管取) 5 10000倍 45 μl 5 μl(从4号管取) 6 45ul 对照 2. 配制PCR预混反应体系: 做5个样本,配制8个样本的预混体系,配制方式如下: 试剂 配制的8个孔的预混体系 20 μl反应体系 2×UltraSYBR Mixture 80 μl 10 μl Forward Primer,10 µM 6.4 μl 0.
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