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分子生物技术在生理学中的应用;细胞复苏和传代的基本过程;4、待细胞长至致密单层时移去培养基,用PBS清洗细胞2次,加入37℃预热的0.25% 胰蛋白酶2mL消化3min左右。显微镜下观察到细胞逐渐变圆但尚未离壁时,吸走胰酶。 5、加入约2mL DMEM完全培养基吹打使细胞悬浮,室温下1100rpm离心5min,弃上清。细胞沉淀中加入DMEM完全培养基,按5×105个细胞/mL的密度接种于培养瓶中,置于37℃、5% CO2细胞培养箱中培养。 ;细胞划痕实验的基本过程;transwell实验的基本过程; 采用TRIzol试剂(Invitrogen)提取细胞总RNA,取1.0g RNA样品,采用SuperScript First-Strand Synthesis kit (Invitrogen) 试剂盒合成cDNA。采用SYBR Green PCR master mix试剂和ABI 7500 Fast Real-Time PCR System仪器进行定量PCR检测。采用ΔCt值的方法对各个样品中基因表达水平进行相对定量。引物由上海捷瑞公司合成。 ;(1)提取总RNA ① 细胞分组处理后,每孔加入1ml Trizol,混匀,使细胞充分裂解后,移入1.5ml 无RNase离心管中,室温静置3-5min; ② 加200μl氯仿,充分混匀,室温静置2 min; ③ 将离心管于4℃,12000g,离心20min; ④ 用移液器小心吸出上层液相,放入另一离心管中; ⑤ 加入与所移出上层液相相同体积的异丙醇,以促进RNA沉淀,轻轻混匀,室温静置10min; ⑥ 4℃,12000g,离心10min,弃上清; ⑦ 在沉淀中加入1ml 75 %乙醇(DEPC水现配),轻轻洗涤沉淀; ⑧ 4℃,12000g,离心5min,弃上清; ⑨ 重复步骤⑦⑧; ⑩ 稍微晾干沉淀,约10min,在RNA略显透明时,加入50~100μl DEPC水溶解RNA,4℃静置过夜使沉淀充分溶解,-70℃保存。;(2)定量和检测总RNA ① 紫外分光光度计检测RNA的产量,用98μl DEPC水调零后,加2μl RNA样品,在260nm处的吸光度,1OD=40μg/ml; ② 根据在260nm和280nm处的吸光值,检测RNA的纯度,纯RNA的OD260/OD280比值应接近2.0(比值最好在1.9-2.1之间)。 ;(3)RT-PCR ① 取1μg总RNA进行反转录,37℃,1h,合成cDNA; ② 引物分别为:VEGF 5-ACCAAGGCCAGCACATAGG-3 (sense) 和 5-ACGCTCCAGGACTTATACCG-3 (antisense);内参为18S rRNA 5-ACCTGGTTGATCCTGCCAGT-3 (sense) 和 5-CTGACCGGGTTGGTTTTGAT-3 (antisense); ③ 根据样品数目依说明书混合PCR反应体系,分至每个PCR小管,每管加入1μl cDNA产物,PCR条件按说明书,共40次循环; ;④ PCR产物的鉴定 A. 0.6g琼脂糖加入1×TAE 50ml,微波炉加热至琼脂糖溶解,稍微冷却后加入GoldView染料2.5μl,混匀,铺板凝固后使用; B. 电泳槽中注入1×TAE溶液至高于凝胶面,PCR产物加相应体积的6×加样缓冲液,混匀上样,用DNA 标准品作为参照,110V电泳20min; C. 紫外灯下观察电泳结果并拍照保存。 ;① 全蛋白提取 细胞分组处理后,用预冷的PBS清洗细胞2次后吸干残留的PBS; 加预冷全蛋白提取缓冲液0.5ml,冰上振荡裂解细胞15min; 细胞刮刀刮取细胞,上下吹打细胞数次,使其悬浮,吸取细胞裂解悬液转移至预冷的1.5ml EP管中,冰上振荡15min; 4℃离心(12,000rpm,20min); 将上清转入预冷的1.5ml EP管,-70℃保存备用; BCA法测定蛋白浓度。;② 免疫印迹 将蛋白样品与加样缓冲液混合,100℃加热5 min,离心3 min,取上清加样后进行蛋白电泳; 电泳条件为初始电压80 V(30 min),待样品进入分离胶后,电压增至110 V,直至电泳结束; 电泳结束后,用硝酸纤维素膜进行转膜。转膜电流1.2 mA/cm2胶面积,250mA恒流湿转2h; 转膜完成后,用立春红染液染色观察转膜效果,TBST洗去立春红(此步染色可省略); 纤维膜与5 %封闭液室温孵育1h; TBST缓冲液洗膜5 min×3次; 加一抗,杂交袋内平缓摇动,4℃过夜; 回收一抗,TBST缓冲液洗膜5 min×3次; 加相应二抗,杂交袋内平缓摇动,室温1 h; 弃液体,TBST缓冲液洗膜5 min×2次,TBS缓冲液洗膜1次; 加发光底物ECL,凝
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