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CTAB法原理总结CTAB法原理总结
富含多糖和次生代谢产物的白桦成熟叶中总RNA的提取 植物生理学通讯 曾凡锁 酚类物质是植物所特有的次生代谢物,它很容易被氧化成褐色的醌类物质,醌类物质与 RNA的不可逆结合,不仅会使RNA的活性丧失,而且在苯酚和氯仿抽提时还会使RNA丢失,因此富含次生代谢产物的植物RNA提取一直是RNA分析研究中的障碍。 要获得完整性好的RNA,植物细胞破胞必须完全、迅速。细胞破碎不完全,不仅使RNA产量降低,而且还会因为植物细胞内部结构的破坏而产生内源性降解;时间过长则已释放的RNA酶还有可能会产生活性而降解RNA。因此这是能否获得高质量RNA的最为关键性的一步(王玉成 2002)。 其次则应考虑如何去除多糖。但CTAB法通常要结合其他操作才能有效去除多糖,常见的方法有低浓度乙醇沉淀法、醋酸钾沉淀法、氯化锂沉淀法、提高缓冲液的氯化钠浓度等。其中用氯化锂沉淀RNA是RNA提取中的常用方法,此法制备的RNA具有纯度高和无多糖等生物大分子共沉淀等优点。 改良CTAB-LiCl法提取枣总RNA体系的建立 中国农学通报 宋蓓 比较不同沉淀方法 CTAB较其它几种试剂更能有效去除多糖和酚类等物质。β-巯基乙醇和PVP去除酚类, KAc及无水乙醇去除多糖。 RNA的沉淀方法很多,如LiC1、异丙醇、NaAc和无水乙醇等。本试验对不同的方法进行了比较,其中LiC1沉淀需要在4℃放置过夜,时间长,但是RNA的产率比后两种方法高很多,且RNA纯度好,没有DNA污染,不需要进行去除DNA的纯化操作,减少了RNA降解的几率;LiC1本身沉淀大片段RNA效果好的特点使得到的RNA大片段损失很少,更适于进行后续的分子生物学试验;而异丙醇沉淀获得的沉淀体积大,导致了多糖和酚类物质的共沉淀作用;1/10体积3 mol/L的NaAc和2.5倍体积的无水乙醇所得的RNA产率较低,且和异丙醇沉淀方法一样存在基因组DNA的污染,后续的纯化操作提高了RNA提取的成本且增加了降解的机会。 几种果实总RNA提取方法的评价 广东农业科学 陈弟 多种RNA提取方法的原理 Trizol法即异硫氰酸胍—苯酚法,异硫氰酸胍可以抑制RNA酶、防止RNA的降解,而酚的作用是使蛋白变性。其原理是内含异硫氰酸胍能迅速破碎细胞,同时使核蛋白复合体中的蛋白变性并释放出核酸;由于释放出的DNA和RNA在特定pH值下的溶解度不同,且分别位于中间相和水相,从而使DNA和RNA得到分离;取出水相后,通过有机溶剂(氯仿)抽提及异丙醇沉淀,可得到纯净RNA。 热硼酸法 (Hot-borate,简称HB法)的原理是将硼酸缓冲体系、蛋白酶K消化蛋白和LiC1选择性沉淀RNA等步骤偶联在一起。硼酸可与酚类化合物依靠氢键形成复合物,二硫苏糖 醇(DTT)作为还原剂,NP-40可阻止酚类物质氧化,聚乙烯吡咯烷酮(PVP)可与多酚化合物形成复合体,这些物质都可以抑制植物组织中酚类物质的氧化及其与RNA的结合,通过LiC1沉淀剩余的酚类物质,从而与RNA分开。 异硫氰酸胍法(Guanidine Thiocyanate,简称GT法)的提取液包括4 mol/L异硫氰酸胍、25 mmol/L柠檬酸钠( p H 7.0 )、0.5%十二烷基肌酸钠、0.1 mol/Lβ-巯基乙醇。其中,异硫氰酸胍作为强变性剂使核酸一蛋白结构发生变化,并有效解离核蛋白与核酸的复合体, 与β-巯基乙醇共同对RNase产生强烈的抑制作用,这样能破裂细胞并迅速释放核酸,然后通过CsCl梯度密度离心去除DNA,有效地得到总RNA。 十二烷基硫磺酸钠法(Sodium Dodecyl Sulfate,简称SDS法) 的提取液有 0.1 mol/L Tris-HCl (pH8.0)、0.05 mol/L EDTA (pH8.0)、0.5 mol/L NaC1、1.5%SDS、0.01%β-巯基乙醇。SDS是一种离子去污剂,能从低离子强度溶液中沉淀核酸与酸性多聚糖;EDTA以螯合二价金属离子,抑制RNA酶的活性,防止RNA降解;Tris-HCl不仅起缓冲作用,还可防止RNA降解;NaC1溶液可提供缓冲反应环境。在缓冲液中加入抗氧化剂或强还原剂(如β-巯基乙醇),可以降低酶类(尤其是氧化酶类)的活性。通过苯酚和氯仿等有机溶剂的抽提去除蛋白质、多糖和酚类等杂质后,加入无水乙醇进行沉淀,即可使RNA分离出来。 十六烷基三甲基溴化铵法(Hexadecyltrimethy Ammonium Bromide. 简称CTAB法)的抽提缓冲液包括2% CTAB、100 mmol/L Tris-HCl(pH 8.0)、1.4 mol/L NaC1、20 mmol/L EDTA (pH 8.0)。其中,CTAB作为离子型表面活性剂,能溶解细胞膜和核膜蛋白,使核蛋白解聚,从而使RNA得以游
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