高致病性猪蓝耳病的流行现状与防控.pptVIP

* * * * * * * * * 2010年其他省份JXA1-R株使用情况 省份 2010年（万头份） 省份 2010年（万头份） 河南 4051.5 天津 2.708 辽宁 12.6 海南 35 四川 1533.6 甘肃 0.04 新疆 545 河北 43.9 北京 36.2 福建 411.4 宁夏 120.05 上海 92.1875 浙江 576.08 黑龙江 0.4 内蒙古 128.5 广西 400 重庆 413.874 吉林 300.3 山东 653.83 青海省 10 陕西 70.5 山西 150 合计 9587.67 高致病性猪蓝耳病的诊断、鉴别诊断和免疫效果评价 1 欧洲型PRRSV与美洲型PRRSV的鉴别诊断 PRRS病毒分为欧洲型与美洲型，目前在我国均有检出。因此，在检测结果为PRRS病毒阳性时，有必要对样品用能鉴别欧洲型PRRSV与美洲型PRRSV的荧光RT-PCR方法进一步做鉴别诊断。 2 经典PRRSV与HP-PRRSV的鉴别诊断 目前我国主要流行的PRRSV为美洲型，但美洲型毒株又可分为以1996年在我国分离的CH-1a株为代表的经典PRRSV毒株和以2006年分离的HP-PRRSV JXA1株为代表的HP-PRRSV毒株。因此，在检测结果为美洲型PRRSV阳性时，有必要对样品用能鉴别经典PRRSV与HP-PRRSV的荧光RT-PCR鉴别诊断试剂盒进行检测。 3 HP-PRRSV与JXA1-R株疫苗的鉴别诊断 在高致病性猪蓝耳病活疫苗（JXA1-R株）应用于临床前，采用针对PRRSV（Nsp2 1594~1680变异株）的RT-PCR方法即可进行高致病性猪蓝耳病活疫苗（JXA1-R株）的分子流行病学调查，但活疫苗应用于临床后，因疫苗毒也具有Nsp2 1594~1680变异株的特征，因此只有建立一种能针对疫苗毒的鉴别检验方法，才能将临床流行毒株与疫苗毒区分开来。针对高致病性猪蓝耳病活疫苗（JXA1-R株）建立的荧光RT-PCR诊断方法可用于该疫苗（JXA1-R株）与包括HP-PRRSV野毒在内的其他所有PRRS病毒的鉴别诊断。 4 疫苗免疫效果评价—血清抗体检测 美国IDEXX公司生产的PRRSV ELISA抗体检测试剂盒，检测N蛋白抗体，阳性值出现早，消失快。因此，该试剂盒主要用于PRRSV感染后的早期诊断。 法国LSI公司生产的PRRSV ELISA试剂盒，检测糖蛋白抗体，阳性值出现较晚，持续时间可达5个月以上。因此，可用于疫苗免疫后的效果评价。 高致病性猪蓝耳病的综合防控措施 从2009~2010年高致病性猪蓝耳病疫情走势来看，疫情范围显著缩小，流行强度明显减弱，但病毒毒力依然很强，污染面仍然很广；2009~2010分离的30株HP-PRRSV经全基因序列测定和致病性实验证明，与2006年HP-PRRSV分离株JXA1株相比具有很高的同源性，且均为高致病性毒株；2010年高致病性猪蓝耳病疫情在一些地区可能呈点状爆发和散发，因此仍然是防控的重点。实验证明高致病性猪蓝耳病活疫苗（JXA1-R株）免疫后能抵御2009年流行的HP-PRRSV强毒株的攻击，因此，高致病性猪蓝耳病是可防、可控的。 高致病性猪蓝耳病的综合防控措施 从目前养猪业的现状来看，可以说高致病性猪蓝耳病是造成我国猪病复杂而严重的罪魁祸首，猪蓝耳病病毒先感染肺部巨噬细胞，进而扩散至全身的单核细胞和组织巨噬细胞，从而破坏了猪的免疫功能，降低了猪的抵抗力，使猪易继发多种致病病原，提高了死亡率，也造成了猪病复杂、严重和难于进行临床诊断等现实问题。从我们在动物实验过程中看到的实验对照组临床症状和剖检病变，最易发生的继发感染主要为副猪嗜血杆菌等病原体，这也是在临床上保育和育肥前期最常见的疾病，因此可以说解决我国猪病复杂而严重的问题，核心是在保证猪瘟等正常免疫的基础上做好高致病性猪蓝耳病的防控。 高致病性猪蓝耳病的综合防控措施 从文献报道和我们的动物实验结果来看，猪蓝耳病的免疫具有明显的毒株相关特点。也就是说，疫苗毒所诱导的免疫能够抵御与其相对应的强毒的感染，但交叉保护与其同源性差异较大的强毒攻击的能力在有些毒株则较差。面对2006年全国80%左右的猪场为猪蓝耳病病毒感染阳性场，而HP-PRRSV所致的高致病性猪蓝耳病疫情仍大面积暴发的现实情况，使我们领悟出为什么当时已在临床广泛使用了的经典猪蓝耳病弱毒疫苗不能抵御HP-PRRSV侵袭的原因。因此采用针对流行毒株的疫苗免疫是防控高致病性猪蓝耳病有效措施之一。 高致病性猪蓝耳病的综合防控措施 从高致病性猪蓝耳病防控工作的经