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_尼龙固定化木瓜蛋白酶
北京师范大学珠海分校 尼龙固定化木瓜蛋白酶 实验报告 小组成员:祝晓晴 孙雪 苏泽宇 邱嘉悦 一.实验原理 通过物理或化学的方法,将水溶性的酶与水不溶性的载体结合,固定在载体上,在一定的空间范围内进行催化反应的酶称为固定化酶。酶的固定化方法有:吸附法(物理吸附、离子吸附)、包埋法、共价键结合法、交联法。固定化酶的优越性主要表现在:(1)在大多数情况下,可提高酶的稳定性;(2)提高酶的使用效率,降低生产成本;(3)酶不与产品混合,制品易于纯化;(4)利用固定化酶,工业上可以大批量、连续化生产。本实验尼龙固定化木瓜蛋白酶属共价键结合法。尼龙长链中的酰胺键,经 HCl水解后,产生游离的-NH基,在一定条件下与双功能试剂戊二醛中的一个-CHO缩合,戊二醛的另一个-CHO则与酶中的游离氨基缩合,形成尼龙(载体)—戊二醛(交联剂)—酶,即尼龙固定化木瓜蛋白酶。 二.实验材料、试剂及仪器 3.1 材料 尼龙布 86 或 66 ,100目,剪成3×3cm2。 3.2试剂 1 1 甲醇溶液 含18.6%CaCL2和18.6%水 (每组50mL):称18.6克CaCL2 溶于18.6 mL蒸馏水,冷却后,用甲醇定容至00 mL。 1 2 3.5mol/L HCl溶液(每组30mL):取29.2 mL浓HCl,定容至100 mL。 1 3 0.2 mol/L硼酸缓冲液 pH 8.4 (每组30mL):称取0.858克Na2B4O7·10H2O和0.68克H3BO3用蒸馏水溶解,定容至100 mL。 1 4 5%戊二醛 以0.2mo1/L pH 8.4硼酸缓冲液配制,每组30mL):取25%戊二醛20mL,用0.2mo1/L pH 8.4硼酸缓冲液定容至00 mL。 2 5 0.1mo1/L pH 7.2磷酸缓冲液 (每组250mL): 称取1.28克Na2HPO4·2H2O和1克NaH2PO4·12H2O用蒸馏水溶解,定容至100 mL。 2 6 0.5mo1/L NaCl溶液〔用0.1mo1/L pH 7.2磷酸缓冲液配制〕(每组150mL): 称取2.93NaCl,用0.1mo1/L pH 7.2磷酸缓冲液溶解,定容至100 mL。 3 7 木瓜蛋白酶溶液 1mg/mL,用0.1mo1/L pH 7.2磷酸缓冲液配制〕 (每组15mL):称取100 mg木瓜蛋白酶粉末,加1 mL激活剂,研磨10min,用0.1mo1/L pH 7.2磷酸缓冲液溶解,定容至100 mL。 3 8 激活剂〔用0.1mo1/L pH 7.2磷酸缓冲液配制,含半胱氨酸10mmo1/L,EDTA 1mmo1/L〕(每组50mL):称取0.12克半胱氨酸和0.04克EDTA,用0.1mo1/L pH 7.2磷酸缓冲液溶解,定容至100 mL。 4 9 1%酪蛋白〔用0.1mo1/L pH 7.2磷酸缓冲液配制〕(每组20mL)。称取1克酪蛋白,加100 mL0.1mo1/L pH 7.2磷酸缓冲液,37℃下保温振荡3h,至酪蛋白溶解。 4 10 20%三氯乙酸 用蒸馏水配制 (每组40mL):称取20克三氯乙酸,加蒸馏水溶解,定容至100 mL。 3.3仪器 恒温水浴锅, 紫外分光光度计, 冰箱。 三.实验步骤 4.1固定化酶的制备 每组取5块尼龙布洗净,凉干。用含18.6% CaC12和18.6%水的甲醇溶液在50℃下保温10秒钟左右,并轻轻搅拌至尼龙布发粘,取出用水冲去污物,用吸水纸吸干。 尼龙布用3.5mo1/L HCl在室温水解45min,用水洗至pH中性。 尼龙布用5%戊二醛在室温下浸泡偶联20min。 4 取出尼龙布,用0.1mol/L pH7.2磷酸缓冲液反复洗去多余的戊二醛,吸干,立即用酶液 1mg/mL 在4℃下固定3.5h 酶液用量每块布为1mL 。 5 从酶液中取出尼龙布 保留残余酶液作测定用 ,用0.5 mo1/L的NaCl 用0.1mol/L pH7.2磷酸缓冲液配制 洗去多余的酶蛋白,即为尼龙固定化酶。 4.2 酶活力测定 (1)溶液酶活力测定 取0.2mL酶液,加入1.8mL激活剂,37℃预热10min,加入37℃预热10min的1%酪蛋白溶液1mL,准确反应10min,加入20%三氯乙酸2mL反应终止酶反应。对照管先加入20%三氯乙酸溶液,后加酪蛋白溶液,其它与测定管相同。过滤,清液于280nm波长下测定光吸收值。 在上述条件下 ,每10min增加0.001个光吸收值为1个酶单位(U)(以下同)。 (2)残留酶活力测定 同溶液酶活力测定。 (3)固定化酶活力测定 取一块尼龙布固定化酶,加入2.0mL激活剂,其余步骤与溶液酶测定相同。 四.数据处理及计算 活力回收 (固定化酶总活力数
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