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RNA抽提与反转录步骤x
RNA抽提步骤 准备: DEPC水配制:1000ml双蒸水中加1mlDEPC,放在1000ml容量瓶中静置后备用。配成终浓度为0.1%,室温搅拌过夜,121℃高压20min,4℃密封保存。注:DEPC属于一种致癌物质,易挥发,要小心并在通风橱中操作,高压后就会分解,其毒力消失。 加Trizon裂解细胞:加入适当量的Trizol至细胞中(直接加入去培养液平板中后用枪吸出,亦可细胞刮下后离心去上清再加,用量约1ml Trizol每3×106、cells)。贴壁细胞在遗弃培养基后,可以直接加入Trizol(按10cm2 / 1ml Trizol的比例)裂解,匀浆一定要彻底。反复吹打以打碎细胞结块,室温放置5min,使其充分裂解。(注:此时可以-80℃长期保存) 4度,12000g×5min离心弃沉淀。 萃取除杂蛋白:加入0.2体积的氯仿,立即剧烈摇动充分混匀。混匀后冰上放置15min。(注:禁用漩涡震荡器,以免基因组DNA断裂,造成基因组DNA污染) 4℃,12000g,离心15min,此时溶液分为三层:下层的酚-氯仿,白色浑浊的中间相多为变性蛋白,水相(RNA所在相),小心吸取水相(宁可损失,也不要吸到中间相),转移至另一干净RNaseFree EP管中;一般水相的体积为Trizol的60℅. 异丙醇沉淀:向水相中加入0.5倍体积(相对于Trizol)的异丙醇,充分混匀,混匀后置于-20℃1~2h或-80℃30min,4℃,12000g,离心5-10min;(经过此步可在管底看到白色RNA沉淀);如果起始量大的话,可以加入异丙醇即可观察到微量浑浊,则可直接离心。弃上清,RNA沉于管底。移去上清。 75%乙醇(DEPC水配制)漂洗:加入0.5-1ml 75%乙醇(让75%乙醇从沉淀上缓缓流过,温和震荡离心管,悬浮沉淀,7500g 5min(转速太大可能会使RNA断裂)吸去乙醇,然后用枪吸沉淀附近乙醇,再短暂离心后小心吸出剩余的液体。 溶解RNA沉淀:用50ul DEPC水或0.5%SDS溶解RNA样品,55—60℃加热5—10min。 去除二级结构:将RNA放置65℃水浴锅5min(去除二级结构)后,迅速放至冰上(防止RNA恢复原有结构); 测浓度、260/280,260/230 检测RNA抽提效果:1% Agarose Gel,220V(用大电流跑迅速跑完防止RNA电泳过程中降解),待溴酚蓝跑完全胶的三分之一时,停止电泳观察结果。见下图1。 RNA保存:-80℃可长年保存(尽量避免放置在4℃,-20℃冰箱) 图1:RNA抽提结果。亮度一般28S18S5S,如果5S rRNA条带过亮,则说明RNA有降解。注:电泳取样量为3μl. RNA反转录步骤 取总RNA 2μg,加入10mM dNTP,OligodT(0.5μg/μl)各1μl; 70度加热5min,冰上放置2min; 在同一管中加入10(Buffer 2μl,RNase抑制剂1μl,反转录酶(50unit/μl)1μl。 轻轻混匀后置于42℃,60分钟。然后置80℃,5分钟。 RNA 2μg 10mM dNTP 1μL OligodT(0.5μg/μl) 1μL 1000ml双蒸水中加1mlDEPC,放在1000ml容量瓶中静置后备用。rizol试剂适用于从细胞和组织中快速分离RNA。TRIzol的主要成分是异硫氰酸胍和酚。异硫氰酸胍属于解偶剂,是一类强力的蛋白质变性剂,可溶解蛋白质主要作用是裂解细胞,使细胞中的蛋白,核酸物质解聚得到释放。酚虽可有效的变性蛋白质,但是它不能完全抑制RNA酶活性,因此Trizol中还加入了8-羟基喹啉、β-巯基乙醇等来抑制内源和外源RNase。在加入氯仿离心后,溶液分为水相和有机相,RNA选择性地进入无DNA和蛋白质的水相中。取出水相用异丙醇沉淀可回收RNA;用乙醇沉淀中间层可回收DNA;用异丙醇沉淀有机相可回收蛋白质。 Trizol试剂可用于小量样品(50~100mg组织、5×106细胞)也适用于大量样品(≥1g组织、107细胞)。对人,动物,植物组织,细菌均适用,整个提取过程在一小时内即可完成。分离的总RNA无蛋白质和DNA污染,可用于Northern blot,dot blot,ployA筛选,体外翻译,RNase保护分析和分子克隆。在用于RT-PCR时如果两条引物存在于一个单一外显子内,建议用无RNase的DNaseⅠ处理RNA样品,避免出现假阳性。共纯化的DNA可用作标准,比较不同样品RNA的得率,也可用于PCR和酶切。蛋白质可用于western blotting。 核酸的最大吸收波长为260nm,蛋白质为280nm,在波长260nm时,1OD值相当于双链DNA浓度为50μg/ml,μg/ml,单链寡核苷酸
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