大鼠一般操作技术精品.pptVIP

固定→用手轻揉鼠尾→静脉充血后剪尾尖（1-2mm）→用手从尾根向尾尖推挤→采血→干棉止血。每次0.1mL * 左手固定动物→滴少量10%可卡因于动物眼内→右手持消毒过毛细吸管→以抗凝剂湿润内壁→眼睑和眼球间旋转刺入→采血后消毒纱布止血30秒。每次0.2-0.3mL * 动物仰卧→固定器固定→剪左侧心区毛→ 皮肤消毒→小号针头注射器在3-4肋间刺入。可达0.5mL * 脊椎脱臼法：用左手按住动物的头部于实验台上，右手抓住尾根部，快速、不间断地向后、略向上使劲拉，使动物的颈椎以致脊椎脱臼死亡。 过量麻醉法 * 将动物固定于解剖台上，从耻骨联合至下颌沿正中线切开皮肤，再从耻骨联合至肋骨下缘沿腹正中线切开腹壁肌肉（不要用力过猛，以免切破腹腔脏器，特别是膀胱）。从肋骨下端向脊柱方向，将两侧腹壁剪开，以便观察腹腔内脏器。应注意不可将腹腔内脏器翻乱，应有次序地检查。 * * * * * 1. 抓取与操作动物时小心不要被咬伤，如果被咬伤需立即用清水冲洗并用碘酒消毒。 2. 抓取动物时用力要恰当,防止动物窒息死亡。 3. 注射给药时要注意安全，注射器不用时要盖上盖子，不要被扎伤。 4. 实验动物在做完所有操作后才进行处死，处死后的动物不要与其他垃圾混合丢弃。 * * 孙 泉 首都医科大学实验动物部 010办公室） sunquan@ccmu.edu.cn * 1.了解动物实验的目的和意义 2.了解实验动物选择和染毒途径。 3.掌握大鼠实验的基本操作技术。 * * 1. 实验动物的选择 2. 实验动物的抓取和固定 3. 性别鉴定 4. 实验动物编号标记 5. 实验动物给药途径和方法（灌胃、腹腔、皮下注射、尾静脉注射） 6. 生物标本的采集 （鼠尾取血、心脏采血、眼眶取血） 7. 实验动物的处死 * * 动物物种选择基本原则： * 健康动物首先看外观： 体形丰满，被毛浓密有光泽、紧贴体表，眼睛明亮，反应行动灵活。 有无明显疾病症状 体重、年龄 * 单手固定 双手固定 固定器 固定板 注意抓取动物的手法 抓取固定时力量大小适宜 * 未成熟鼠生殖器发育不明显，肛门与生殖器之间的距离来区分。远——♂、近——♀。 成年鼠：雄性卧位可见睾丸，雌性可见腹部有12个乳头。 * 常用标记，两种染料（苦味酸和中性红或品红） 先左后右，先上后下 * 穿耳孔法 左耳代表十位，右耳代表个位 应注意防止孔口愈合，多使用消毒滑石粉涂抹在打孔局部 * 原则： 同一实验中，实验动物的年龄尽可能一致，实验动物体重大致相近； 同组、同性别动物体重差异应小于平均体重的10%；不同组间同性别动物体重均值差异小于5%；♀♂动物各半，且♀♂实验结果分开统计、分析。 称重 编号 随机分组 * 经口染毒（喂饲、灌胃、吞咽胶囊等） 经呼吸道染毒（静式、动式和气管内注入） 经皮肤染毒 注射染毒（皮下、皮内、肌内、腹腔和鼠尾静脉注射等） 其它（直肠内、鼻腔等） * 抓取老鼠时应是鼠 成竖直线 灌胃成功时，所遇阻力较小 灌胃时注意胃容量 0.1ml/10g-0.3ml/10g ，＜1mL * 腹下1/3外侧，避免损伤实质器官 30-45°角刺入 扎入时有“落空感”，回抽无尿液或血液 * 酒精擦拭尾部 左手食指，拇指配合按住尾端 右手持注射器，针尖轻轻抬起与血管平行刺入 血管由红变白，按压止血 * 俯卧固定，左手拇指和食指捏住颈背部皮肤提起，右手持针沿纵轴方向刺入皮下，进针时感觉有阻力，继续刺入，突然阻力消失，活动针头，确认刺入皮下即可注射药液。 * 俯卧保定，与皮肤平行刺入捏住的皮肤，注射部位局部形成皮丘。为避免药液流出，停留片刻，再将针头拨出 * 血液采集（断尾采血、眼眶采血、心脏采血等） 尿液采集 粪便采集 * *