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演讲人：
日期:
病理科细胞学检查指引
CATALOGUE
目录
01
概述与背景
02
样本采集与处理
03
检查方法与流程
04
质量控制标准
05
结果报告与解读
06
持续改进与维护
01
概述与背景
细胞学检查的基本概念
细胞学检查是通过显微镜观察细胞形态、结构和排列特征，以诊断疾病的一种技术，广泛应用于肿瘤筛查、炎症鉴别和感染性疾病诊断。
主要应用场景
包括宫颈液基细胞学（TCT）、痰液细胞学、胸腹水细胞学、细针穿刺细胞学（FNA）等，覆盖呼吸系统、泌尿系统、生殖系统等多领域病变检测。
技术发展现状
结合免疫细胞化学、分子病理学等新技术，显著提高了对早期癌变和罕见疾病的诊断准确性。
细胞学检查定义与应用
标本处理与质量控制
由资深病理医师综合分析细胞异型性、核分裂象等指标，出具权威诊断报告，为临床治疗提供依据。
诊断与报告签发
多学科协作
参与肿瘤MDT讨论，联合影像科、临床科室优化诊疗方案，并指导后续活检或手术范围。
病理科需规范接收、固定、染色标本，确保细胞完整性，避免人为假象影响诊断结果。
病理科角色与职责
早期病变筛查
如宫颈癌筛查通过TCT检测高危型HPV感染及癌前病变，显著降低晚期癌症发病率。
明确疾病性质
区分良恶性肿瘤或反应性增生，例如甲状腺FNA可避免不必要的手术探查。
疗效监测与预后评估
通过动态观察化疗后胸腹水中的肿瘤细胞变化，评估治疗方案有效性及患者生存期预测。
指导精准治疗
利用细胞学标本进行PD-L1、HER2等分子检测，为靶向治疗或免疫治疗提供生物标志物支持。
检查目的与临床意义
02
样本采集与处理
样本收集规范要求
标准化采集工具
使用无菌、无DNA/RNA酶的专用采样刷或刮片，避免交叉污染，确保细胞完整性。采集部位需充分暴露，避开坏死或出血区域。
临床信息标注
多部位分层采样
样本容器必须清晰标注患者ID、采集部位及临床初步诊断，必要时附影像学或内镜报告，以辅助病理医师精准判读。
对于疑似肿瘤病例，需从病灶中心、边缘及邻近正常组织分别取样，提高检出率并评估浸润范围。
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即时固定原则
冷藏运输（2-8℃）适用于大多数样本，若含特殊标记物（如激素受体），需使用干冰维持-20℃以下，避免蛋白降解。
温度控制运输
生物安全包装
采用三层防漏容器（内层密封袋、中层吸水材料、外层硬质盒），符合UN3373标准，并附危险品标识。
液体样本需在采集后立即加入等量95%乙醇或专用细胞保存液，防止细胞自溶；实体组织需置于4℃生理盐水湿润纱布中暂存，2小时内送检。
样本保存与运输条件
初步处理与固定方法
离心富集技术
液体样本需以1500rpm离心5分钟，弃上清后重悬沉淀，涂片厚度需均匀（单层细胞最佳），避免重叠影响镜下观察。
自动化制片系统
采用薄层液基细胞学技术（如ThinPrep或SurePath），可减少血液、黏液干扰，提升异常细胞检出敏感性达20%以上。
固定液选择
推荐95%乙醇（常规染色）或10%中性缓冲福尔马林（免疫细胞化学），固定时间严格控制在15-30分钟，过长易致细胞收缩变形。
03
检查方法与流程
染色技术选择标准
巴氏染色法
适用于妇科脱落细胞学检查，能清晰显示细胞核与胞浆结构，尤其对鳞状上皮细胞病变的鉴别具有高特异性，染色后细胞核呈深蓝色，胞浆呈粉红色或绿色。
01
瑞氏-吉姆萨染色
广泛用于血液、骨髓及体液标本，可区分中性粒细胞、淋巴细胞等血细胞成分，对淋巴瘤和白血病诊断有重要价值，染色后细胞核呈紫红色，胞浆呈淡蓝色。
免疫细胞化学染色
针对特定抗原标记物（如CK7、TTF-1）进行染色，用于肿瘤来源鉴别和分子分型，需根据抗体特性选择适当的抗原修复方法和显色系统。
特殊染色技术
如阿尔新蓝染色用于黏液物质检测，普鲁士蓝染色用于含铁血黄素鉴定，需结合临床需求选择特异性染色方案。
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04
显微镜操作步骤
低倍镜系统扫描
首先使用10倍物镜全面观察玻片，定位细胞密度高的区域并筛查异常细胞簇，避免遗漏微小病灶，同时评估标本满意度（如血液稀释程度）。
高倍镜详细观察
切换40倍物镜分析细胞核形态细节，包括核膜不规则性、染色质分布、核仁大小及数量，记录核浆比异常、病理性核分裂等恶性特征。
油镜确认诊断
对可疑区域使用100倍油镜进一步验证，尤其适用于微生物（如结核杆菌）或结晶物质的鉴定，需调节微调焦旋钮获取最佳景深。
多视野统计学评估
对非均匀分布标本（如痰液）需至少观察20个代表性视野，计算异常细胞占比，避免抽样误差影响诊断准确性。
根据细胞数量、保存状态和背景干扰分为满意（5000个保存完好的鳞状细胞）、基本满意（含少量诊断细胞）和不满意（仅见血液或坏死物）三个等级。
标本质量分级
评估炎性细胞浸润程度（如中性粒细胞计数）、红细胞污染比例以及是否存在坏死碎屑，
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