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DB37/T4092—2020

鱼类肠道微生物分离鉴定通用技术要求

1范围

本标准规定了鱼类肠道微生物样本的采集、分离、培养、鉴定及保藏等。

本标准适用于淡水及海水鱼类肠道微生物的研究。

2规范性引用文件

下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其必威体育精装版版本(包括所有的修改单)适用于本文件。

GB19489实验室生物安全通用要求

GB/T30744深海微生物样品前处理技术规范

SN/T2632微生物菌种常规保藏技术规程

3术语与定义

下列术语和定义适用于本文件。

3.1

肠道微生物intestinalmicroorganism

生长于动物肠道,并帮助宿主完成多种生理生化功能的微生物群落。

3.2

16SrDNA

是编码16SrRNA的基因,16SrRNA为核糖体RNA的一个亚基,是系统分类研究中最常用的分子标签,可被用于菌种鉴定。

3.3

聚合酶链式反应polymerasechainreaction

一种分子生物学技术,用于扩增特定的DNA/RNA片段,这种方法可在生物体外进行,不必依赖大肠杆菌或酵母菌等生物体。

3.4

Sanger测序Sangersequencing

即双脱氧链终止法测序,为第一代DNA测序技术,是一种常用的核酸测序技术,用于DNA分析,由英国生物化学家弗雷德里克?桑格于1977年发明。

4缩略语

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DB37/T4092—2020

下列缩略语适用于本文件。

PBS:磷酸盐缓冲液(PhosphateBufferSaline)

PCR:聚合酶链式反应(PolymeraseChainReaction)

OD:光密度(OpticalDensity)

5基本要求

5.1实验室通用要求

实验室应满足GB19489中关于一级或以上级别生物安全实验室的要求。

5.2鱼类样本要求

鱼类样本应尽量保证鲜活,死亡鱼类样本最长死亡时间不应超过24h。

5.3实验用具准备

一次性无菌手套、无菌眼科镊、无菌眼科剪、无菌PBS(配方见附录A.1)、2216E培养基(配方见附录A.2)、LB培养基(配方见附录A.3)、无菌水、无菌50mL离心管、医用托盘、75%消毒酒精、涂布棒等。

6鱼类肠道微生物样本采集和保存

6.1鱼类肠道微生物样本采集与储存

6.1.1活体鱼类样本应先进行麻醉,之后,在超净工作台内,用75%的酒精对鱼体擦拭消毒。

6.1.2将鱼类样品从泄殖腔处沿腹部剖开,用无菌PBS冲洗鱼类腹部,用吸水纸擦拭腹腔。

6.1.3分离并剪下鱼类完整肠道,将肠道内容物全部挤到无菌离心管中,并将肠道内壁残留物轻刮于离心管中。

6.1.4对肠道内容物进行称重,内容物总质量应控制在10g以下,按1g内容物加入3mL无菌PBS的比例进行稀释,震荡混匀,得到肠道微生物样本。

6.2肠道微生物样本存储

肠道微生物样本应储存在2℃~8℃低温环境下,宜立即进行处理,保存期限不应超过一周。

7鱼类肠道可培养微生物的分离、培养及鉴定

7.1肠道微生物分离和纯化

7.1.1肠道微生物分离

7.1.1.1

取100μL肠道微生物样本,用无菌PBS稀释到1000μL,制成10-1样品稀释液,震荡混匀,

备用。

7.1.1.2

取100μL10-1样品稀释液,用无菌PBS稀释到1000μL,制成10-2样品稀释液,震荡混匀,

备用。

7.1.1.3

按上述步骤依次稀释获得10-3、10-4的样品稀释液,震荡混匀,备用。

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DB37/T4092—2020

7.1.1.4取10-2,10-3,10-4样品稀释液进行固体培养基平板涂布,涂布平板宜28℃恒温培养,培养时间1~3天,每隔12h观察菌落生长状态。

7.1.2肠道微生物纯化

7.1.2.1观察涂布平板的生长情况及菌落形态特征,选择合适稀释度(约10~200个菌落)的平板挑选菌落,选择不同形态的单菌落编号后划线,于28℃恒温培养12h~24h。

7.1.2.2观察划线培养菌落形态特征是否单一,对于形态结构不单一的平板继续挑单菌落并划线培养,直至获得菌落形态特征一致的纯培养单菌,并填写《菌落形态特征统计表》,参见附录B。

7.2肠道微生物培养

挑取分离、纯化出的纯培养单菌落接种至液体培养基中,宜150rpm28℃条件下恒温震荡培养至菌液OD600值达到0.6~1.0之间。

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