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宫颈细胞学技术质控 宫颈细胞学技术 • 宫颈细胞学技术质控 • 宫颈细胞学技术操作中常见问题及分析 细胞学技术质控 • 细胞学制片技术,自标本采集至封片。 • 严谨规范的制片流程是细胞学涂片质量的保障,良好的制 片是细胞学诊断的重要条件。 细胞学制片技术流程 • 1、标本收集 • 2、接收登记 • 3、制片前标本处理 • 4 、制片 • 5、固定、染色 • 6、脱水、透明、封片 标本采集规范 • 采集前注意事项 • 1、避开经期 • 2、检查前24h禁止盆浴、不做阴道冲洗或阴道内用药、避 免同房 • 3、尽量避免短期内重复取材,以免出现假阴性结果 标本采集规范 • 1、分泌物太多时用棉签擦拭干净后再取; • 2、采集区域为宫颈鳞柱交界处; • 3、旋转时应向同一方向,避免来回转动以免细胞量不足, 且容易加大创伤引起出血; 宫颈鳞柱交界区 涂片申请单 • 年龄、月经史,是否在 哺乳期及临床检查情况 应填写清楚。申请单编 号与涂片编号保持一致。 接收登记 • 1、认真核对标本信息与申请单是否一致; • 2、检查样本有无漏出; • 3、核对标本条码、编号、条形码三号一致无误后制片。 制片前处理 血性标本处理:用细胞清洗液(9 ):冰醋酸(1)处理; 粘液标本:细胞清洗液处理; 处理后的标本应在试管内加保存液充分震荡再转移至标本瓶, 并在保存液静置至少15分钟后制片。 制片 • 1严格按操作流程制片 • 2、保持手套清洁,严禁用手触摸滤膜孔,防止上膜和下膜 时污染; • 3、核对玻片编号与标本编号一致,并将条码号写在玻片; • 4 、转移涂片至固定液时动作迅速; 固定 • 95%乙醇为妇科细胞涂片最常用固定液。经济、便捷,效 果好,无污染。 • 固定时间:15-30分钟 固定液 固定液作为涂片的第一道程 序,细胞容易脱落其中,引 起污染,500ml乙醇每固定 100张涂片应过滤后再用, 或更换新液。 细胞病理技术制作规范及质量控制 • 宫颈细胞学制片需要采用巴氏染色 • 非宫颈细胞学制片可以采用巴氏、HE染色 巴氏染色 • 通过巴氏染色,表层角化细胞 胞浆呈现红色,中层呈现蓝色, 底层呈蓝绿色;这一特点可以 用来判断雌激素水平的高低, 同时也能对诊断带来帮助。 染液使用 • 固定液应每日更换,涂片较多时每100或每天张更换或过滤; • 每日染色前先预染通过后再染色; • 苏木素、EA过滤; • 染色酒精及时盖上,定期更换; • 确保脱水酒精浓度; • 二甲苯定期更换; 染色质控 • 细胞固定好,无退变无污染; • 核染色清晰,深浅适宜,核浆对比清晰; • 胞浆染色对比鲜明; • 脱水透明彻底; • 中性树胶湿封,封片胶无外溢; 细胞学档案管理 • 细胞标本保存至报告发出后两周。 • 阴性涂片保存至少1年。 • 阳性涂片保存15年。 染色良好 表层细胞 中表层细胞 副基底层细胞 颈管腺细胞 标本采集常见问题 1、细胞量少、出血或涂片过厚; 2、大量粘液未祛除; 涂片厚、出血 粘液、炎性细胞 涂片过厚 粘液 大量红细胞 涂片厚薄适宜 标本接收常见问题 • 1、申请单信息不完整,玻片有破损,申请单与玻片标记不 符; • 2、样本瓶盖未拧紧,样本渗漏; • 解决:申请单信息不完整应联系临床医生,完善信息核实 后再接收,若玻片破损严重、样本、标签与申请单内容不 符,字迹不清,样本渗漏,污染等应拒收并做好记录。 固定不良 • 固定不及时,固定液浓度 不足以及细胞碎片污染, 是在工作中最常见的问题, 由固定引起的不良后果几 乎不能挽回,需严格按标 准操作。 固定不良的解决方案 • 1、制片完成迅速将涂片 放入固定液; • 2、固定液防止挥发,保 持密闭; 制片中的问题分析 • 血性及粘液标本 • 污染 • 细胞量少 • 细胞量多 • 空洞形成 • 血性或粘液性标本 血性、粘液标本 血液、粘液标本的处理 • 离心--加处理液震荡--离心--保存液 • 处理前 血性及粘液标处理
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