动物实验基本操作技术课件.pptVIP

大白鼠灌胃方法 5-2-4 号牌 将不锈钢或铝质号牌固定在狗或猴的链条或颈圈上。兔号牌则固定在耳朵上。少量动物时也可将号牌挂在笼具上，但应防止抓取操作后将动物放错笼具而混淆编号。 5-分组与编号 * 5-2-5 毛色 利用动物的毛色将其编号，用于少量的狗、马、猫、猴等大动物的编号。 5-2-6 剪毛 用剪刀在狗背上剪出号码，此方法简单，字迹清楚、可靠，便于观察。 5-2-7 打孔 用打孔器在兔耳上打孔或剪口。 5-分组与编号 * 小鼠和大鼠标号示图 * 6-血样的采集 根据不同的实验要求及不同种类的实验动物而采取不同的采血方法。如： 心脏、胸主动脉、股动脉、静脉、剪(割、刺)尾、眼眶、断头 * （1）剪尾采血：需血量较少时常用此法。 先将动物固定，将鼠尾浸在45℃左右温水中几分钟或用酒精棉球涂擦鼠尾,使尾部血管充盈,剪去尾尖1—2mm(小鼠)或3—5mm(大鼠),使血液顺血管壁自由流入试管或用血红蛋白吸管吸取。采血结束时,伤口消毒并压迫止血。此法每只鼠一般可采血10次以上，小鼠每次可取血0.1ml左右，大鼠可取血0.3—0.5ml。 6-血样的采集 * 大鼠尾静脉取血方法 * （2）眼眶后静脉丛采血： 操作者一手固定小鼠或大鼠，食指和拇指轻轻压迫颈部两侧，使眶后静脉丛充血，另一只手持毛细采血管，以45℃从内眼角刺入，并向下旋转，感觉刺入静脉丛后，再向外边退边吸，当得到所需血量后，放松加于颈部的压力，并拔出采血器，以防穿刺孔出血。若技术熟练，此方法在短期内可重复采血，小鼠一次可采0.2-0.3ml，大鼠可采血约0.5ml。如只进行一次取血，可采用摘眼球法。 6-血样的采集 * 小鼠眼眶后静脉丛取血方法 * （3）股动脉采血：大量取血时常用此法。需手术分离股动脉。小鼠的一次采血量可达0.5ml，大鼠可达2.0ml。 （4）断头采血 （5）心脏采血 6-血样的采集 * 犬股动脉取血方法 * 猴后肢静脉取血方法 * 小白鼠断头取血方法 * 大鼠颈静脉取血方法 * 兔耳缘静脉取血方法 * 犬颈静脉取血方法 * （6）心脏采血： 将动物麻醉并仰卧固定置实验台上。心前区皮肤脱毛，常规消毒。于胸肋骨间心尖博动最强处将针头垂直刺入心脏，由于心脏的搏动，血液可自动进入注射器。如无血液流出，拔出针头后重新穿刺，不能左右来回斜穿，以免造成气胸而导致动物很快死亡。经6—7天后可重复穿刺采血。 6-血样的采集 * 目的：防止动物挣扎，保持安静 防止意外损伤，便于操作 7-麻醉 7-1、全身麻醉 1%硫喷妥钠:15mg/kg，iv/ip 2%戊巴比妥:40mg/kg，iv/ip 盐酸氯胺酮:40mg/kg，sc/im 复方氯胺酮:0.01ml/kg，sc/im 速眠新(846)注射液 每Kg体重: 杂种犬：0.1---0.15ml 纯种犬：0.04—0.08ml 猫、兔：0.2—0.3ml 羊、猴：0.1—0.15ml 鼠 ：0.3—0.8ml 7-1-1 吸入法 乙醚、氯仿等挥发性麻醉剂用吸入法麻醉，适用于各种实验动物。大鼠、小鼠可将头部放入蘸有乙醚棉球的广口瓶或干燥器内，4—6分钟后即处于麻醉状态。如实验过程较长，可在其鼻部放棉花或纱布，不时滴加乙醚维持，也可用乙醚先麻醉后再用非挥发性麻醉剂维持麻醉。 在给药过程中，如果发现动物的角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。如果呼吸停止，可进行人工呼吸，并配以咖啡因、可拉明等苏醒剂，待恢复自主呼吸后再进行实验。因乙醚易引起上呼吸道分泌物增多，导致窒息，可先注射阿托品预防。 7-1-2 腹腔和静脉给药麻醉法 非挥发性麻醉剂如戊巴比妥钠、硫喷妥钠等巴比妥类药物及水合氯醛、氨基甲酸乙酯等，可用腹腔或静脉注射麻醉。大鼠、小鼠、豚鼠常用腹腔给药麻醉；兔、犬、猴等多用静脉给药麻醉。此法主要用于需麻醉2小时以上的实验，麻醉过程平稳，但麻醉深度和使用剂量较难掌握和控制，一旦过量可引起血压下降和呼吸抑制，可用戊四氮、可拉明等急救。 7-2 局部麻醉 1%盐酸普鲁卡因，局部注射 2%盐酸可卡因，粘膜表面麻醉 局部麻醉方法很多，有表面麻醉，浸润麻醉和阻断麻醉等，使用最多的是浸润麻醉。浸润麻醉是将药物注射于皮内、皮下组织或手术野深部组织，以阻断用药局部的神经传导，使痛觉消失。常用的浸润麻醉药是1%盐酸普鲁卡因，此药安全有效、吸收快、显效快，但失效也快。 施行浸润麻醉时，用皮试针头先皮内注射，然后换局麻长针头，由皮点进针，放射到皮点四周，继续注射，直至要求麻醉区域的皮肤都被浸润为止。根据实验操作要求的深度，可按皮下、筋膜、肌肉