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小鼠急性肺水肿实验报告 　　复旦大学实验动物学实验报告　　实验报告一　　小鼠的一般技术操作　　一、实验目的和要求：　　通过实际操作，掌握小鼠实验的一般操作方法，包括动物的抓取和保定、性别鉴定、编号、给药、麻醉、采血、处死、解剖等方法。　　二、实验基本步骤：　　抓取和保定　　先用右手将小鼠的尾巴提起，至于鼠笼或粗糙的平面上，当小鼠向前挣扎行进时，再用左手的拇指和示指捏住小鼠两耳后颈部皮肤，翻转小鼠至于掌心，拉直后肢。以小指拉住小鼠尾巴即可。在一些特殊的实验中，如进行尾静脉注射时，可使用专门的小鼠固定器进行保定。　　性别鉴定　　将小鼠抓取后，观察其肛门及生殖器之间的距离，距离远的为雄性，距离近的为雌性。另外翻转小鼠观察生殖器附近，性成熟的雄性小鼠的睾丸降至阴囊内，会有明显的突起；雌性小鼠的肛门至会阴处有一条无毛覆盖的细线。　　编号方法　　常用的有染色法、耳缘打孔法、烙印法、挂牌法。此外还有断趾法、剪尾法、被毛剪号法、笼子编号法等。　　在本次实验中，我们小组使用的是染色法。　　去毛方法　　常用的有拔毛法、剪毛法、剃毛法、脱毛法。　　给药方法　　常用的有经口灌胃法、经呼吸道吸入、经皮肤吸收和注射给药法。　　1．经口给药法　　灌胃法：左手固定小鼠，右手持灌胃器，将灌胃针从小鼠的一侧犬齿缺失处插入口中，灌胃针竖起靠向口腔后壁，使小鼠消化道成直线，沿咽喉壁缓慢插入食管，使其前段到达膈肌位置，灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，以免损伤、穿破食管或误入气管。　　口服法　　在本次实验中，我们小组使用的是灌胃法。　　2.注射给药法　　皮下注射　　肌肉注射　　腹腔注射　　静脉注射　　在本次实验中，我们使用的是皮下注射、腹腔注射、静脉注射。　　采血方法　　1.断头取血　　2.眼眶后静脉丛穿刺采血　　3.尾静脉切割采血法　　4.摘眼球采血法　　5.心脏采血　　在本次实验中，我们小组使用的是眼眶后静脉丛穿刺采血、尾静脉切割采血、摘眼球采血法、心脏采血。　　麻醉方法　　1.常用局部麻醉剂：普鲁卡因、利多卡因　　2.常用全身麻醉剂：乙醚、苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠、巴比妥钠、氨基甲酸乙酯。　　在本次实验中，对小鼠采用腹腔注射麻醉，方法与腹腔注射给药一样，麻醉剂是2%水合氯醛，剂量为400mg/kg，注射量为/25g。　　皮肤移植　　在本次实验中，在小鼠尾巴上切取长8mm，宽3mm的皮肤，切取效果不好。　　处死方法　　1.颈椎脱臼法　　2.断头法　　3.击打法　　4.急性大出血法　　5.药物致死法　　在本次实验中，我们小组采用的是颈椎脱臼法。　　解剖方法　　解剖步骤如下：动物尸体取仰卧位，将四肢固定，用水浸湿被毛。从下颌中央开始到耻骨联合正中垂直切口，用骨剪把左右肋骨剪断后，将胸骨向前下方翻开，即可暴露胸、腹腔。按胸腔、腹腔、颅腔的次序观察各脏器的位置、形状及彼此相互关系，然后分别取下。先在胸腔入口处切断食管和气管，将心和肺一起取出；再依次摘除腹部脏器脾、肝、肾上腺、肾、胃、肠和盆腔器官，分别进行各脏器的检查。　　在本次实验中，我们小组解剖了一只雄性小鼠和一只雌性小鼠。在观察各个脏器之后，着重又观察了胸腺、胰腺、肾上腺、雌性小鼠的子宫、卵巢、雄性小鼠的睾丸、凝固腺。　　实验报告二　　兔的一般操作技术　　一、目的和要求　　通过实际操作，基本掌握兔的抓取和保定、性别鉴定、灌胃、耳缘静脉采血注射、解剖、　　处死等操作技术。　　二、实验基本步骤：　　抓取和保定　　1.抓取：轻轻打开笼门，勿使兔受惊，当兔安静下来时，用手伸入笼内，从头前部阻。它跑动，用右手把两耳轻轻压于手心内，抓住颈背部皮肤提起兔，然后用左手托住臀部，兔身的重量大部分落在左手掌上。　　2.保定：将兔置于实验台上，待兔安静后。双手各抓一侧兔前肢，肘部夹住兔后肢后向胸腹部靠拢，展开兔前肢，暴露兔雄部。　　性别鉴定　　使兔下腹部朝向观察者，将生殖器周围的皮肤拨开，可见一圆孔，里面暴露出阴茎，则为雄性，反之为雌性。　　给药方法　　1.灌胃　　2.耳缘静脉注射　　在本次实验中，我们小组采用的是灌胃给药法，由于没有固定器　　病理生理学实验　　1.实验性缺氧症　　实验目的与要求　　在动物身上复制低张性缺氧及血液型缺氧的模型；观察两种类型缺氧对动物呼吸的影响和皮肤颜色的变化实验原理　　广口瓶内空气的氧分压降低-----低张性缺氧　　动物体内形成大量HbCO-----血液型缺氧　　动物体内形成大量高铁血红蛋白-----血液型缺氧实验对象　　小白鼠　　实验器材与药品　　125ml带塞广口瓶3只，秒表一块，镊子一把，钠石灰,CO发生装置，甲酸，浓