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碱裂解法质粒小量提取 文档
碱裂解法质粒小量提取 试验原理: JQhwH9 ?碱裂解法是较常用的提取的方法。其优点是收获率高,适于多数的菌株,所得产物经纯化后可满足多数的DNA重组操作。十二烷基磺进行质粒的小量制备。十二烷基磺酸钠(SDS)是一种阴离子表面活性剂,它既能使细菌细胞裂解,又能使一些蛋白质变性。用SDS处理细菌后,会导致细菌细胞破裂,释放出质粒 DNA和染色体DNA,两种DNA在强碱环境都会变性。由于质粒和主染色体的拓扑结构不同,变性时前者虽然两条链分离,却仍然缠绕在一起不分开;但后者完全变性分甚至出现断裂,因此,当加入pH4.8的酸性乙酸钾降低溶液pH值,使溶液pH值恢复较低的近中性水平时,质粒的两条小分子单链可迅速复性恢复双链结构,但是主染色体DNA则难以复性。在离心时,大部分主染色体与细胞碎片,杂质等缠绕一起被沉淀,而可溶性的质粒DNA留在上清夜中。再由异丙醇沉淀、乙醇洗涤,可得到纯化的质粒DNA。碱裂解法提取的质粒DNA可直接用于酶切、PCR扩增、银染序列分析等。仪器与主要试剂 主要试剂:????? 溶液I:?50 mmol/L 葡萄糖 ???????????????????????? 10 mmol/L EDTA ???????????????????????? 25 mmol/L Tris-HCl (pH 8.0)??????????????? 溶液II:200 mmol/L NaOH ?1% SDS ??????????????? 溶液III:?3 mol/L NaAc (pH4.8)溶液 95%乙醇 %70乙醇 TE缓冲液:10 mmol/L Tris-HCl ,pH 7.5 1 mmol/L EDTA方法: 1.将大肠杆菌菌落挑取一环接种在含有2毫升加入抗菌素的LB液体培养基的10毫升试管里,37振培过夜,16~18小时 2.转移以上菌液1.5毫升于EP管中,8000rpm离心30秒 3.小心去除上清,并用吸水纸吸干残余液体,再将沉淀物在振荡器上振匀 4.加入溶液I 100μl,盖紧EP管盖,翻转数次,冰上放置10分钟 5.加入溶液II 200μl,温和翻转EP管5次(可观察到溶液逐步由混浊变为透明),冰上放置5分钟 6.加入溶液III 150μl,将EP管盖紧后累累来回翻转23次,混匀后冰上放置20分钟 7.12000rpm离心15分钟 8.将上清转移到另一个EP管中(吸取时不可吸入底部的沉淀)。加入等体积的酚和氯仿:异戊醇各抽提一次 9.加入1毫升预冷的无水乙醇和1/10体积的NaAc(3 mol/L,pH5.2),盖紧,并翻转EP管数次混匀 10.?? 置于-20冰箱1~2小时 11.?? 15000rpm离心15分钟,去除上清,收集管底白色沉淀 12.?? 70%乙醇洗涤一次,空气干燥或真空抽干 13.?? 将沉淀溶于50μl TE缓冲液或去离子水,完全溶解后,-20保存 (1)溶液I:pH8.0 GET缓冲液(50mmol葡萄糖,10mmol/LEDTA,25mmol/L Tris-HCl);溶液I可成批配制,在10 lbf/in2(6.895x104Pa)高压下蒸气灭菌15min,贮存于4。葡萄糖的作用是使悬浮后的大肠杆菌不会很快沉积到管子的底部,增加溶液的粘度,维持渗透压及防止DNA受机械剪切力作用而降解。EDTA是Ca2+ 和Mg2+等二价金属离子的螯合剂,在溶液I中加入EDTA,是要把大肠杆菌细胞中的二价金属离子都螯合掉。从而起到抑制DNase对DNA的降解和抑制微生物生长的作用。 Uo!#pw)p溶液:0.2mol/LNaOH(内含1%的SDS),这个用的时候需现配。要新配置溶液是为了避免NaOH接触空气中的CO2而减弱了碱性。NaOH是最佳溶解细胞的试剂。不管是大肠杆菌还是哺乳动物细胞,碰到了碱都会在瞬间溶解,这是由于细胞膜发生了从bilayer(双层膜)结构向micelle(微囊)结构的相变化。用不新鲜的0.4 N NaOH,即便有SDS也无法有效溶解大肠杆菌。SDS是离子型表面活性剂。它主要作用是:a溶解细胞膜上的脂质与蛋白,从而破坏细胞膜。b解聚细胞中的核蛋白。c能与蛋白质结合成为R-O-SO3-…R+-蛋白质的复合物,使蛋白质变性而沉淀下来。SDS能抑制核糖核酸酶的作用,所以在接下来的提取过程必须把它去除干净,以便下一步试验的更好进行。溶液:pH4.8乙酸钾溶液(60ml 5mol/L KAc,11.5ml冰醋酸,28.5mlH2O);该溶液钾离子浓度为3mol/L,醋酸根离子浓度为5mol/L.pH4.8的乙酸钾溶液是为了把抽提液的pH调至中性,从而使变性的质粒DNA复性,且稳定存在。溶液III加入后的沉淀实际上是K+置换了SDS中
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