Transwell侵袭实验.docVIP

Transwell侵袭实验4.对数生长期的细胞，胰酶消化细胞，0.1%血清1640悬浮，计数，稀释至密度为1?106/ml，每空中加200μl细胞悬液 5.24孔板下室一般加入600μl含30%新生牛血清的1640培养基 6.24h后，弃去孔中培液，PBS洗2遍，甲醇固定20分钟，0.1%结晶紫染色15-20 min，用清水洗3遍以上，用棉签轻轻擦掉上层未迁移细胞 7.400倍显微镜下随即五个视野观察细胞，记数 个人觉得做Transwell就像小马过河一样，要讲究个体化，不同的细胞侵袭能力不同，胶的稀释倍数、细胞上样量、上下室血清浓度差以及孵育时间也不同。 对于你的问题，我觉的不管是在温箱中放5个小时或者是在超静工作台中风干，其主要目的是为了让Matrigel从液体状变成胶冻状，在温箱中放置5个小时后，拿出来上室中肯定会有液体残留，此时一定要将残留的液体洗干净，然后在水化一下基底膜。 (1) 吸去培养液，用棉签轻轻擦除上室聚碳酸酯膜内侧面贴壁细胞，用0.01MPBS 漂洗两次，4%多聚甲醛固定10 分钟； (2) 吸去固定液，将膜风干，每孔加0.6ml 0.1%结晶紫染液，室温中放置20 分钟； (3) 轻轻甩去染色液，用蒸馏水洗涤各孔，将上室取出，从聚碳酸酯膜内侧面用吸水纸吸干水分，自然干燥； (4) 测定前，将各实验组上室置入新的24 孔板中，每孔加0.6ml 33％醋酸脱色，充分振荡，每组设定5 复孔；同时设置调零孔（33％醋酸）；比色：每孔取脱色液150μl 加入96 孔板中，在570nm 处测定OD 值。 2．步骤 2．1 Transwell小室制备 2．1．1 无基质胶Transwell小室制备 ① 包被基底膜（冰浴操作）： 用50mg/LMatrigel 1:8稀释液包被Transwell小室底部膜的上室面。 24孔板每空50-70uL:20uL Matrigel + 160uL DMEM/F-12 4°风干，过夜。 如果需要在下室面铺FN的话，可将200ul枪头的尖端剪掉,吸取FN均匀涂抹在小室的下面。用胶原（collagen）的话，一般配成0.5mg/ml，直接用枪吸了涂在膜上。 ② 水化基底膜： 吸出培养板中残余液体，每孔加入50ul含10g/LBSA的无血清培养液，37℃，30min。 另有tianjin_glioma战友提供的方法：在上室的聚碳酸酯膜上加入稀释后的Matrigel (3.9ug/ul) 60-80μl (注意体积不可太大，以刚把聚碳酸酯膜浸湿为最好)，置37℃ 30min使Matrigel聚合成凝胶。 2．1．2 有基质胶的Transwell小室制备 Chemicon公司的ECM550系列说明书要求，将小室放入培养板中，在上室加入300μl预温的无血清培养基，室温下静置15－30min，使基质胶再水化。再吸去剩余培养液。 2．2 制备细胞悬液 ① 制备细胞悬液前可先让细胞撤血清饥饿12－24h，进一步去除血清的影响。但这一步并不是必须的。 ② 消化细胞，终止消化后离心弃去培养液，用PBS洗1－2遍，用含BSA的无血清培养基重悬。调整细胞密度至1－10×105，个人认为不要超过5×105。 具体实验时采用密度要自己摸索，因为不同细胞，其侵袭能力是不同的。个人经验，细胞量过多，穿过膜的细胞会过多过快，如果最后用计数法统计结果的话将难以计数；而过少的话，可能还没到检测的时间点，所有的细胞都已穿过，因此最少也要保证在收样的时候，上室内还要有一定量的细胞存在。 个人认为，对照组和处理尽量不要分开计数，因为细胞数目的差异会严重影响实验结果。如果需要对细胞预处理而不得不分开计数，那么计数一定要多重复几次，力求准确，尽量保证对照组和处理组细胞密度一致。 2．3 接种细胞 ① 取细胞悬液100－200μl加入Transwell小室，不同公司的、不同大小的Transwell小室对细胞悬液量有不同要求，请参考说明书。24孔板小室一般200μl。 ② 24孔板下室一般加入500μl含FBS或趋化因子的培养基，不同的培养板加的量有不同要求，具体请参考说明书。这里要特别注意的是，下层培养液和小室间常会有气泡产生，一旦产生气泡，下层培养液的趋化作用就减弱甚至消失了，在种板的时候要特别留心，一旦出现气泡，要将小室提起，去除气泡，再将小室放进培养板。 ③ 培养细胞：常规培养12－48h（主要依癌细胞侵袭能力而定）。时间点的选择除了要考虑到细胞细胞侵袭力外，处理因素对细胞数目的影响也不可忽视。 以我的课题为例，我使用的药物不仅会抑制肿瘤细胞侵袭力，还对细胞增殖有明显抑制。我选择的药物浓度是用MTT筛选出的72h的IC50。用这个浓度处理细胞，24h内对细胞增殖并无明显抑制，但24h后，抑制作用就开始出现了。所以，用这个浓度