鼠标系列实验.doc

新乡医学院实验课教案首页 课程名称：普通生物学 授课教师姓名及职称：高启禹 讲师 一、授课题目 小白鼠系列实验 二、授课对象 09级生物技术专业及三全 三、实验教学目标与课时分配 1.学会实验动物小白鼠的抓取、固定和性别鉴定 2.初步掌握小鼠的给药途径和方法 3.初步学会小鼠常规的几种采血方法 4.熟悉小鼠的组织结构 四、授课重点 1.小鼠的采血和注射方式 2.小鼠的组织结构 五、授课难点 1．腹腔注射 2．小鼠组织结构 六、授课形式 实验教学 七、授课方法与课前准备 讲授+演示 预实验 八、教材与参考文献 黄诗笺等主编.《动物生物学》实验指导，高等教育出版社； 北京联合大学普通生物学实验讲义。 九、思考题 1.怎样用简单的方法识别脂肪和胸腺。 2.几种采血方法的优缺点。 十、教研室主任及课程负责人签字 教研室主任（签字 ） 课程负责人（签字） 2010年11月23 日 2010年11月24 日 新乡医学院实验课教案 课程名称：普通生物学 授课教师姓名及职称：高启禹 讲师 基本内容 一、实验目的 1学习小型哺乳动物的外部测量法、采血方法、鼠类腹腔注射和皮下注射方法，进一步掌握哺乳动物一般解剖方法。 2了解小脑对躯体运动的调节机能。 3.了解小鼠呼吸系统、消化系统、泄殖系统的组成结构及特点。 二、实验内容 1、小白鼠的抓取固定、外部测量、性别鉴定、灌胃、注射和采血。 (1)抓取固定: 用右手提起尾部，放在实验台上，在其向前爬行时，用左手抓住两耳及头部皮肤，再置小白鼠于左手心，拉直四肢并用手指夹住肢体固定，右手可进行注射或其他操作。 (2)外部测量:采用直尺测小鼠体长及尾长。 (3)性别鉴定:成年鼠采用生殖器外部形态判断,幼鼠比较生殖器与肛门间的距离. (4)灌胃: 用左手捉持固定小白鼠，使口部朝上，颈部宜拉直但不宜过紧，以免窒息。右手持灌胃器，先从小白鼠口角插入口腔，再从舌前面紧沿上颚轻轻插入食管内，如灌胃器插入时很通畅且很深，证明它在食管内，此时可将药液注入灌注量：0.005～0.025ml/g，最大量不得超过1ml/只。 (5)注射:有肌肉注射、皮下注射、尾静脉注射、腹腔注射,主要演示腹腔注射方法。 皮下注射:小白鼠的皮下注射用得较多。注射时，用左手拇、食指捉住鼠两耳及头皮，腹部向上，左手无名指及小指夹住鼠尾，右手持连有5号注射针头的注射器，将注射针头刺入腹部两侧皮下。注意勿将药液注入皮内，以免影响药物吸收。针头不宜过粗，否则药液将会自针头入口流出。注射量：0.005～0.20 mg/g，最大量：每只不超过0.5 ml。另法是：将小鼠放在鼠笼上，用左手小指和无名指捏住鼠尾，轻轻向后拉，用拇指和食指捏起背部皮肤，再用右手将注射器针头刺入背部皮下。 肌肉注射:小鼠和大鼠肌肉较小，肌肉注射不常用，如需肌肉注射，也可注入股部肌肉。注射量每腿一般不超过0.2 ml。 尾静脉注射:将小白鼠固定在一铁丝笼或特别的筒内，使尾露在外面。用体积分数为70%的乙醇涂擦尾巴或浸在45℃热水中，使尾部静脉充血。用连有4号针头的注射器自鼠尾根部1/3处两侧以约～角(几乎平行)刺入尾静脉，若针头已插入血管则针芯很易推动，且尾部皮肤不肿胀或不冒水滴，静脉成一条白线。否则说明针并未插入静脉血管(。注射量：(0.01～0.02) ml/g。 腹腔注射：抓鼠法与灌胃法同，将腹部朝上，右手持注射器在下腹左或右侧(避开膀胱)朝头方向将针头刺入皮下，前进少许再以450角通过腹肌刺入腹腔注射药液。为避免针头刺入内脏，应将鼠头放低使内脏移向横膈膜，同时针头不宜刺入太深、太上，避免刺破肝脏。注射量：0.01～0.025 ml/g。注药时先将注射器回抽，观察有无回血，以防刺入血管或内脏器官内。 (6)采血 尾静脉取血:用于小量取血，将鼠身固定或麻醉，鼠尾浸泡在45℃左右的温水中几分钟，或用二甲苯、乙醇棉球涂擦，扩张尾部血管，擦干后，剪去尾尖0.3～0.5cm，让血滴入盛器内或用血红蛋白吸管吸取，必要时，可从尾根向尾尖挤压取血。取血结束时，以干棉球压迫止血。此法小鼠每次可取血0.1ml。 眶后静脉丛取血:准备好长约10cm的玻璃管，一端烧制成直径1～1.5mm，长约1cm的毛细管，另一端渐大成喇叭形，事先充入1%肝素溶液浸润内壁并烤干备用。取血时，左手拇指和食指抓住两耳之间的头部皮肤，使头部固定，轻轻压迫动物的颈部两侧，阻断头部静脉血液回流，使眼球充分外突，眶后静脉丛充血，右手持毛细管与鼠面成45o角，刺入下眼睑与眼球之间，轻轻向眼底方向移动，并向下捻动，大鼠刺入4～5mm，小鼠2～3mm可达眶后静脉丛，稍加吸引，血流入毛细管，达到所需血量时，拔出玻管松开左手，自可止血。也可用带有7号针头的1ml注射器代替玻管取血。这种方法小鼠一次