AOEB染料精确称取AO(吖啶橙)、EB各1mg,分别溶于10ml.docVIP

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AO/EB染料: 精确称取AO(吖啶橙)、EB各1mg,分别溶于10ml pH7.2 PBS中使之配成100μg/ml的储备液,用前等量混合,备用。 AO/EB染色及观察结果:取已经培养好并加样孵育后的预观察细胞悬液 100μl,加入AO/EB染料4μl混匀,置1滴于载玻片,上覆盖玻片,荧光显微镜下观察结果并计数200个细胞统计结果。 凋亡的细胞呈现为染色增强,荧光更为明亮,均匀一致的圆状或固缩状、团块状结构。非凋亡细胞核呈现荧光深浅不一的结构样特征。二者形态迥然相异,很易判别。在荧光显微镜下观察,可见四种细胞形态:活细胞(VN),核染色质着绿色并呈正常结构;早期凋亡细胞(VA),核染色质着绿色呈固缩状或圆珠状;非凋亡的死亡细胞(NVN),核染色质着橘红色并呈正常结构;晚期凋亡细胞(NVA),核染色质为橘红色并呈固缩状或圆珠状。 凋亡比例=(VA+NVA)/(VN+VA+NVA+NVN)*100% 正常细胞(核染色质结构正常,胞膜完整,着均匀的绿色);早期凋亡细胞(核染亮绿色呈致密斑块或碎片状);晚期凋亡细胞(核染橘红色呈致密斑块或碎片状);坏死细胞(胞膜破损、核膜完整,染色质染均匀的红色) 取AO(100 μg/ml)和EB(100 μg/ml)等体积混匀制成AO-EB荧光染液。将培养细胞用PBS离心洗涤两次,稀释至106/ml,取1 ml细胞悬液(106细胞)离心收集细胞,加入25 μl PBS重新悬浮细胞,与1 μl AO-EB荧光染液混合,取10 μl点片,荧光显微镜下观察、照像。 AO/EB染色液怎么配? 吖啶橙和溴乙锭分别溶于PBS(PH7.2),浓度为100μg/mL。 临用前,按1∶1混合即可。 吖啶橙/溴化乙锭双荧光染色测定细胞凋亡(acridine orange/ethidium bromide, AO/EB): (细胞爬片),在6孔培养板中预先置入玻璃盖玻片,接种细胞悬液,干预后,予95%乙醇固定15分钟,微干,然后准备荧光染色。将100mg/L溶于PBS的吖啶橙和100mg/L溶于PBS的溴化乙锭各5μl(临用前混合加入,加样量宜小,有时各2μl-5μl足够,量太大容易形成细胞凋亡的假阳性),在照相前混匀后加入,轻轻吹打,30秒后用激光共聚焦显微镜观察照相。(有人用15mg吖啶橙溶于100ml pH6.8的PBS中过滤,避光保存。)计取5个视野,共100个细胞中凋亡细胞百分数。 (如制成细胞悬液,取100μl PBS稀释的细胞悬液,加2μl的染色液,其中AO/EB,各含100μg/ml,加入染料30秒后观察摄像。) (有人用PBS配制吖啶橙/溴化乙锭(AO/EB)混合液,各含100μg/ml。细胞离心,悬液于PBS中,取100μl细胞悬液加4μl荧光染色液,轻轻吹打,滴至载玻片上,加盖玻片后立即置荧光显微镜下观察。) 吖啶橙能透过细胞膜而嵌入DNA,使之呈现绿色。溴化乙锭仅能透过破损的细胞膜而嵌入DNA使之呈橘红色,且橘红色亮度胜过吖啶橙的绿色。凋亡的细胞由于染色质高度浓缩使其细胞核着色不均匀,而未凋亡的细胞则呈正常结构,着色均匀一致,在荧光显微镜下观察,可见四种细胞形态:活细胞,核染色质着绿色并呈正常结构;早期凋亡细胞,核染色质显现绿色并呈固缩状或片段状;非凋亡的死亡细胞, 核染色质着橘红色并呈正常结构;晚期凋亡细胞,核染色质着橘红色并呈固缩状或片段状。 AO/EB染色最好是活细胞染色, 因为该实验的原理就是AO可以被活细胞吸收。而EB不能透过或细胞完整的细胞膜。这样,对于活细胞而言AO和EB进入细胞的速度是不一样的,所以显出AO的绿色,对于死细胞,AO/EB是同时进入细胞的,但是EB的橙红色比AO的绿色耀眼,所以,显出的是EB的橙红色。凋亡细胞介于二者之间。 如果是死细胞(固定过的)细胞膜就不是完整的了。这样凋亡和死亡的假阳性率必然要增加。 用AO/EB染色的荧光显微镜的激发和阻断波长要多少? 488激发,接收为500-550,图片很好的 1.1 细胞系及主要试剂   U251人脑胶质瘤细胞系引自第二军医大学长征医院神经外科。吖啶橙(Acridine orange,AO)、溴乙锭(Ethidium bromide,EB)、噻唑蓝(Thiazolyl blue,MTT)、碘化丙锭(Propidium iodide,PI)均为Sigma公司生产,DMEM(Gibco公司生产),顺铂(DDP,山东齐鲁制药厂生产)。   1.2 实验处理及方法   1.2.1 细胞培养:U251细胞由含10%小牛血清的DMEM培养基37℃5%CO2恒温孵箱培养。试验前用台盼蓝染色法鉴定活力在98%以上。   1.2.2 凋亡的诱导及AO/EB双染色〔1〕:待细胞长至80%汇合,加入顺铂(5、10、20μg/

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