实验动物的编号﹑捉拿﹑固定方法.docVIP

3.3实验动物的编号﹑捉拿﹑固定方法3.3.1?? 动物编号方法? ??? 大动物多用挂牌法或用铝环固定在耳朵上，牌或环上有编号；羊或猪多用耳缺法（图3.3-1），原则是左个右十，上三下一, 如:右耳下边有两个缺口,左耳上方有两个缺口下方有一个缺口,则编号为27号。小动物可用苦味酸或硝酸银涂于体表不同部位（图3.3-2）。原则是：先左后右，从前到后。用单一颜色可标记1～10号，若用两种颜色配合使用，其中一种颜色代表个位数，另一种代表十位数，可编到99号。? 　　　　　　　　　　　　???????? 　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　 ??? 鱼类的编号目前尚无统一的标准，一般通过剪缺鳍条表示，具体的含义可由术者自行确定。也有用专门的仪器将带有数字的钢丝打入鱼的顶盖骨，捕捞后在显微镜下鉴定。3.3.2 动物捉拿和固定方法??? 在实验过程中，为了手术操作方便，顺利进行实验项目的观察记录，必须将动物麻醉和固定在特制的实验台上(图3.3-3)。固定动物的方法一般多采用仰卧位，它适用作颈、胸、腹、股等部位的实验；俯卧位适用于作脑和脊髓部位的实验。? ??? (1)狗的捆绑与固定?? 至少由2～3人进行。捆绑前实验者应先对其轻柔抚摸，避免使其惊恐或激怒；用一条粗棉绳兜住上、下颌，在上颌处打一结(勿太紧)，再绕回下颌打第二个结，然后将绳引向头后部，在颈项上打第三个结且在其上打一活结（图3.3-4）。切记住兜绳时，要注意观察狗的动向，以防被其咬伤。如狗不能合作，须用长柄狗头钳夹持其颈部，并按倒在地，以限制其头部活动，再按上述方法捆绑其嘴。捆嘴后使其侧卧，一人固定其肢体，另一人注射麻醉药。此时，应注意狗可能出现挣扎，甚至大小便俱下，以及由于这种捆绑动作往往致使狗呼吸急促，甚至屏气等问题。待动物进入到麻醉状态后，立即松捆，以防窒息。将麻醉好的狗仰卧置于实验台上，用特制的狗头夹固定狗头(图3.3-3)。固定前将狗舌拽出口外，避免堵塞气道。将狗嘴伸入铁圈，再将直铁杆插入上、下颌之间，再下旋铁杆，使弯形铁条紧压犬的下颌（仰卧固定）或压在鼻梁上（俯卧固定）。再将狗头夹固定在手术台上。固定好狗头后，取绳索用其一端分别绑在前肢的腕关节上部和后肢的踝关节上部，绳索的另一端分别固定在实验台同侧的固定钩上。固定两前肢时，亦可将两根绳索交叉从犬的背后穿过并将对侧前肢压在绳索下,分别绑在实验台两例的固定钩上。若采取俯卧位固定时，绑前肢的绳索可不交叉，直接绑在同侧的固定钩上。?? (2)猫? 捉持猫时应戴手套，防止被其抓伤（图3.4-5）。先将猫关入特制的玻璃容器中，投入乙醚棉团对其进行快速麻醉，然后乘其未醒立即固定在猫袋或实验台上。?? (3)兔? 捉持家兔时只须实验者和助手将其抓牢或按住即可。正确捉持方法为：一手抓住家兔颈背部皮肤，轻轻提起，另一手托住其臀部，使其呈坐位姿势（图3.4-6）。?? 兔可固定在兔盒或兔台上（3.4-7）。在手术台上用兔头夹固定头部(图3.3-3A),把嘴套入铁圈内，调整铁圈至最适位置然后将兔头夹的铁柄固定在手术台上。或用一根较粗棉线绳一端打个活结套住兔的两只上门齿，另一端栓在实验台前端的铁柱上。做颈部手术时,可将一粗注射器筒垫于动物的项下,以抬高颈部,便于操作。兔的四肢固定和狗相同。　 (4) 小鼠、大鼠? 实验者右手捉住小鼠尾，鼠会本能地向前爬行。左手攥紧鼠颈背部皮肤，使其腹部向上，拉直躯干，并以左手小指和掌部夹住其尾固定在左手上（图3.3-8）。可作腹腔麻醉。亦可用金属筒、有机玻璃筒或铁丝笼式固定器固定，露出尾部，作尾静脉注射。捉持大鼠的方法基本同小鼠。大鼠在惊恐或激怒时会咬人，捉拿时可戴防护手套，或用厚布盖住鼠身作防护，握住整个身体，并固定头骨，防止被咬伤。动作应轻柔，切忌粗暴。也可用钳子夹持。最后再根据需要，将大鼠置于固定笼内或捆绑四肢。?? (5) 豚鼠　右手横握豚鼠腹前部，左手轻托后肢（图3.3-9）。?? (6) 蛙? 实验者一手拇指、食指和中指控制蛙两前肢，无名指和小指压住两后肢（图3.3-10）。??? (7)鱼类的保存、运输和固定?? 实验鱼的保存最基本的要求是要有适宜的水源，包括合适的化学成分和水温。保存鱼的水温最好接近鱼所处的自然环境，避免温度剧烈变动。从别处运输来的鱼，在入池之前，应使其有一段水温适应过程，逐渐使其达到池中的水温。活动性强的鱼类以放在圆形容器或池中为宜，以让它们能持续游动而不被碰伤。实验水槽或水族箱应有循环流水和过滤净化装置，小水族箱可用活性碳或玻璃纤维过滤，每周至少将全部水更换一次。更换的水最好通过紫外光以减少微生物感染的可能性。输送的水管最好是玻璃或塑料管，不应用铜或铁管。实验鱼在养育期间，应投以适量的饵料，最好选用